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1、Page 1关于医学关于医学动物物实验操操作技作技术第一张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月动物实验：动物实验是用实验动物作为人的替身进行各种生命科学实验的过程。动物实验操作技术：是实施动物实验的重要手段，在不同的研究领域有其不同的目的和应用，一些基本操作技术是共同的，基本的动物实验技术需要训练。内容：动物实验的准备、动物实验基本操作技术、动物实验后的管理技术以及应该注意的影响动物实验效果的因素等第二张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月动物实验结果动物实验结果动物实验结果动物实验结果By Chen Min-li动物的反应动物的反应 ：R R(A+B+C)DE(A+B+C)D
2、E式中：式中：式中：式中：R R 实验动物的总反应实验动物的总反应实验动物的总反应实验动物的总反应 A A 实验动物种的共同反应实验动物种的共同反应实验动物种的共同反应实验动物种的共同反应 B B 动物品种及品系特有的反应动物品种及品系特有的反应动物品种及品系特有的反应动物品种及品系特有的反应 C C 动物个体反应（个体差异）动物个体反应（个体差异）动物个体反应（个体差异）动物个体反应（个体差异）D D 环境的影响（包括实验处理）环境的影响（包括实验处理）环境的影响（包括实验处理）环境的影响（包括实验处理）E E 实验误差实验误差实验误差实验误差(实验操作相关实验操作相关实验操作相关实验操作相
3、关)第三张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第一节第一节 动物实验前的准备动物实验前的准备l一、动物实验相关的准备一、动物实验相关的准备l实验目的明确（课题设计）：研究、申报新药资料l动物实验相配套设备、仪器、试剂l标准实验动物饲养设施第四张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月l二、实验动物相关的准备二、实验动物相关的准备 l实验动物的质量合格证明 l适量的饲料和垫料（高脂等特殊饲料）l运输中的各种因素对实验动物的影响，并应查看运输检疫证明 l动物需要隔离观察（一般37d的适应观察）第五张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月三、实验动物的分组三、实验动物的分组随机化原
4、则：样本具有极好的代表性，非实验因素方面具有极好的均衡性,提高实验资料的可比性与结论的说服力。完全随机化的效果是否永远最好?不一定。关键取决于样本含量的大小。若样本含量很大,完全随机化的效果比较理想;若样本含量比较小,有时完全随机化的结果可能会出现某些偏差。例如：24只小鼠,其中16只雌性,8只雄性,若采用完全随机化方式均分成2组,则有可能一组中的12只小鼠全是雌性的,另一组中有4只雌性、8只雄性小鼠。“性别”这个重要的非实验因素就严重地影响实验。此时,宜采用“分层随机化”。随机化的方法有多种,可以查“随机数字表”、“随机排列表”或查“用计算机产生的伪随机数字表”第六张，PPT共一百一十二页，
5、创作于2022年6月实验单位随机分为三组分组情况动物号码123456789101112131415随机数字186240191240839534194491690330余 数321131221121333归 组CBAACABBAABACCCA组346910B组2781112C组15131415第七张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第八张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月动情前期可见大量有核上皮细胞动情前期可见大量有核上皮细胞第九张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月动情期可见大量角化上皮细胞动情期可见大量角化上皮细胞第十张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月
6、交配后的大鼠阴道分泌物，可见精子交配后的大鼠阴道分泌物，可见精子第十一张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月四、实验动物的编号与标记四、实验动物的编号与标记1、染色法：用化学试剂或药品在实验动物体表的不同部位进行涂染，并用不同颜色区别各组动物。编号原则是先左后右，从前到后，从上到下。有时用两种颜色一个代表十位、一个代表个位。常用的染色剂有3%5%的苦味酸（黄色）、2%的硝酸银溶液（咖啡色）、0.5%的中性品红溶液（红色）和煤焦油酒精溶液（黑色）。第十二张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第十三张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月2、耳缘剪孔法：是在动物的耳边缘剪出不
7、同的缺口或打成不同的小孔进行标记的方法。为防止孔、口愈合，一般在打孔后用消毒的滑石粉涂抹在孔、口局部。由打孔或剪切的位置和孔数代表编号，一般在耳内按上、中、下打孔，分别代表1、2、3，在相应位置剪缺口代表4、5、6，剪两个缺口代表7、8、9，无孔或缺口为10。一般左耳代表个位数、右耳代表十位数。3、烙印法：用烙印钳或刺针将号码刺在或烙印在动物无体毛或明显部位，如耳、面、鼻部及四肢等，然后用溶在酒精中的黑墨在针刺处涂抹。这种方法适用于大中型实验动物，操作时要注意防止感染。第十四张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第十五张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月（四）号牌法：用特制的
8、金属号牌固定在实验动物的耳上或颈项部，挂牌时要注意避开血管。此法适用于小动物,特别是转基因动物的培育和实验。（五）笼子编号法：不在动物身体上作标记而把装动物的笼子进行编号，也叫替代法。第十六张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第一节、实验动物的抓取与固定第一节、实验动物的抓取与固定第十七张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第二节第二节 实验动物的抓取和固定实验动物的抓取和固定第十八张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 1 1、小鼠的抓取保定：、小鼠的抓取保定：器材：小鼠饲养盒器材：小鼠饲养盒+面罩面罩1 1套。套。方法步骤：方法步骤：1 1、用右手拇指和食指捏、用
9、右手拇指和食指捏 住小鼠尾巴中部将小鼠提住小鼠尾巴中部将小鼠提 起，放在饲养合的面罩上。起，放在饲养合的面罩上。2 2、用左手拇指和食指迅速、用左手拇指和食指迅速、准确地捏住小鼠的两耳后、准确地捏住小鼠的两耳后、颈背部的皮肤，将小鼠提起颈背部的皮肤，将小鼠提起。第十九张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 3 3、翻翻转转左左手手掌掌，以以左左手手掌掌心心和和中中指指夹夹 小小鼠鼠背背部部的的皮皮肤肤，使使小小鼠鼠整整个个呈呈一一条条 直线。直线。4 4、用用左左手手无无名名指指压压住住小小鼠鼠背背部部的的皮皮肤肤，小指压住小鼠的尾巴根部。小指压住小鼠的尾巴根部。5 5、松松开开捏捏住
10、住小小鼠鼠尾尾巴巴的的右右手手拇拇指指和和食食指。指。第二十张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第二十一张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月手术固定法：用乙醚等麻醉药品麻醉后，用长2030cm的线绳分别系在四肢上，再把四肢的线绳分别系在固定板四角的钉子上，并且在头部上颚切齿的地方牵一根线绳达到完全固定。在静脉给药时，先根据小鼠的大小选择合适的固定器，打开鼠筒盖，把小鼠放在里面，只露出尾巴；或者用倒放的烧杯将鼠扣住，只露出尾巴并压住。第二十二张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月二、大鼠的抓取与固定二、大鼠的抓取与固定2、大鼠的抓取与固定、大鼠的抓取与固定抓取方法：4
11、5周龄以内的大鼠同小鼠；周龄较大的大鼠其尾部皮肤容易被剥脱，所以用左手从背部中央到胸部捏起来抓住。抓取时最好带防护手套，但手套不宜过厚。手固定法：同小鼠。手术固定法：同小鼠。静脉给药或采血时同小鼠。第二十三张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第二十四张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第二十五张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月三、豚鼠的抓取与固定三、豚鼠的抓取与固定抓取方法：抓取幼小豚鼠时，用手捧起来；成熟的大豚鼠，用手大把抓起胸肋部即可。注意不能粗野，更不能抓取腰腹部，这样容易造成肝破裂而死亡。手固定法：将左手的食指和中指放在豚鼠颈背部两侧，拇指和无名指放在肋
12、部，分别用手指夹住左右前肢抓起来。反转左手，用右手的拇指和食指夹住右后肢，用中指和无名指夹住左后肢是豚鼠整体伸直成一条直线。一个人固定操作时，坐在椅子上，用右手拿着豚鼠的后肢夹在两腿之间，用大腿代替右手夹住。手术固定法：同大、小鼠。第二十六张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 方法步骤：方法步骤：1 1、先用左手轻轻扣、先用左手轻轻扣、按住豚鼠背部。按住豚鼠背部。2 2、顺势抓紧其肩胛上方皮肤，、顺势抓紧其肩胛上方皮肤，拇指和食指环箍其颈部。拇指和食指环箍其颈部。3 3、用右手轻轻托住其臀部，、用右手轻轻托住其臀部，即可将豚鼠抓取保定。即可将豚鼠抓取保定。第二十七张，PPT共一百一十
13、二页，创作于2022年6月四、家兔的抓取与固定四、家兔的抓取与固定抓取方法：用一只手大把抓住颈背部皮肤提起来，另一只手托住其臀部，让其重心落在托其臀部的手上，运送时，还要抓住颈肩部皮肤抱着兔子运送。手固定法：在灌胃给药时，人坐在椅子上，用一只手抓住颈背部皮肤，另一只手抓住两后肢放在两腿之间，大腿夹住兔子的下半身，用空着的手抓住两前肢固定之，抓住颈背部的手同时捏着两只耳朵，不让头部转动。第二十八张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月固定器固定法：耳静脉给药或采血时用盒式固定法；从颈动脉采血或手术实验时用台式固定法。盒式固定法：把兔子放在盒子里，只露出头部，用转扭拧固定器固定家兔。台式固定
14、法：将麻醉的兔子仰卧，用纱布条依次将四肢捆绑固定于固定台的两侧，然后把头部放在金属制的首伽和咀环上固定。第二十九张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月兔的抓取保定方法1：步骤：1、用右手把兔的两耳拿在手心并抓住颈后部皮肤，把兔提起。2、然后用左手托住兔的臀部。第三十张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月方法2：器材：兔保定架步骤：1、打开保定架的上盖，抓取并将兔放进架内，迅速关上保定架的上盖。2、右手抓住兔耳朵将头部拉过保定架的卡栓，将兔的脖子保定。3、如果兔挣扎，可用手在它的背上轻轻抚摸，使其安静。第三十一张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月五、犬的抓取与固定五、犬
15、的抓取与固定抓取方法：先给犬带上系有铁链条的脖套，对于性情凶猛的犬，要用特制的钳式长柄犬夹夹住犬颈部将犬按倒后，再系脖套和链条。手固定法：首先绑住犬嘴，方法是饲养员或犬主人从侧面靠近并轻轻抚摸其颈部皮毛，然后迅速用布带绑住犬嘴，布带从下颌绕到上颌打一个结，再绕到下颌打一个结，然后将布带绕到头后颈，在颈后部再打一个结，最后打一个活结，对于未经驯服的犬，可用长柄犬夹夹住犬颈部按倒后强制绑嘴。手术台固定法：麻醉后，松开布带，将犬仰卧在手术台上，先固定四肢，再固定头部。第三十二张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第三十三张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月六、猴的抓取与固定六、猴的
16、抓取与固定抓取方法：从笼内抓取时，饲养人员应右手持短柄网罩，左臂紧靠门侧，以防止笼门敞开时猴逃出。右手将网罩塞入笼内，由上而下罩捕。当猴被罩住后，应立即将网罩翻转取出笼外，罩猴在地，由罩外抓住猴的颈部，清掀网罩，再提取猴的手臂反背握住。固定方法：1.徒手固定：将猴两前肢反背其背后，操作者用一只手握着，用另一只手将猴两后肢捉住即可固定。2.固定架固定：使用“猴限制椅”或“猴固定架”进行固定第三十四张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第三十五张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月七、猪的抓取与固定七、猪的抓取与固定抓取方法：小猪常采用双手提起后肢，两膝夹住猪背倒立固定；成猪可采用
17、站立固定。固定方法：可将猪仰放在“V”字型槽内固定，也可用木制三角固定架和帆布吊兜固定（挖四个孔使其四肢下伸）。如没有三脚架，也可以用犬固定台。第三十六张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月一、常用的麻醉剂（一）挥发性麻醉剂 包括乙醚、氯仿、异氟烷（Isoflurane）。（二）非挥发性麻醉剂 包括苯巴比妥钠、戊巴比妥钠(Pentobarbitol)、硫喷妥钠、氨基甲酸乙脂、水合氯醛、氯胺胴（Ketamine）、噻啦嗪（Xylazine）、速眠新、乌拉坦。（三）中药麻醉剂 包括洋金花、氢溴酸东莨菪碱等。第三节、实验动物的麻醉第三节、实验动物的麻醉第三十七张，PPT共一百一十二页，创作于
18、2022年6月二、动物的麻醉方法 （一）全身麻醉1.吸入麻醉：多采用乙醚做麻醉药。把带有乙醚的棉球放入玻璃容器内，挥发后将动物放入容器内46分钟，动物失去运动力后立即取出动物以避免麻醉过深致死。此法多用于短期操作性实验，乙醚麻醉的优点是苏醒快，但是对呼吸道刺激性大，长时间容易窒息死亡。2.注射麻醉：大、小鼠和豚鼠常采用腹腔注射法进行全身麻醉，犬、猫、兔等既可腹腔注射也可静脉注射给药。注射时，先用麻醉药总量的2/3，密切观察动物生命体征的变化，如已经达到所需麻醉的程度，余下的麻醉药则不用，避免麻醉过深抑制大脑呼吸中枢导致动物死亡第三十八张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 各种动物常用
19、的全身麻醉剂的剂量及途径剂量(mg/kg体重)动物 注射 戊巴比 巴比 苯巴比 硫喷 异戊巴 氯胺酮 氯醛糖 乌拉坦 途径 妥 钠 妥钠 妥 钠 妥钠 妥 钠 比妥钠 (20%25%)(1%3%)(1%2%)(5%10%)(10%)小鼠 i.p 5080 200 /1520 100 100200 /i.m /1350大鼠 i.p 4050 200 /40100 100 100200 550 /i.m /1350 s.c /100110 /8001000豚鼠 i.p 3050 100 /100 /i.m /2050 /1350兔 i.p 2540 /80120 /i.v 2030 225300/
20、1520 4050 /80100 7501000犬 i.p 30 /2050 80100 1040 /i.v 30 225 50100 1520 4050 /60 7501000 口服 /350 /100 1500 注:i.p指腹腔注射,i.m指肌肉注射,s.c指皮下注射,i.v指静脉注射第三十九张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月（二）局部麻醉（二）局部麻醉1.表面麻醉:利用局部麻醉药的组织穿透作用，透过粘膜，阻滞浅表的神经末梢，称为表面麻醉。常用利多卡因，眼部用药点滴、鼻内用要涂敷、咽喉气管用药喷雾、尿道灌注给药。2.区域阻滞麻醉：在手术区内四周和底部注射麻醉药阻断疼痛的向心传导
21、，称为区域阻滞麻醉。常用普鲁卡因。3.神经干(丛)阻滞麻醉：在神经干(丛)的四周注射麻醉药，阻滞其传导，使其所支配的区域疼痛感觉消失，称为神经干(丛)阻滞麻醉。常用利多卡因。4.局部浸润麻醉：沿手术切口逐层注射局部麻醉药，阻滞组织中的神经末梢，称为局部浸润麻醉。常用普鲁卡因。第四十张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月三、麻醉注意事项三、麻醉注意事项1.有些麻醉药，如乙醚挥发性很强，易燃，使用时应远离火源，平时应妥善保存。2.应特别注意各种麻醉药的剂量和给药途径，切莫因药量过大而引起中毒或死亡。3.注射时，一般要求缓慢注入，并随时观察动物肌肉的紧张性、角膜反射、呼吸频率、疼痛反射等指标
22、。4.注意保温，采取实验桌内装灯、电褥、台灯照射等。5.万一麻醉过量，根据不同情况采取措施，如施行人工呼吸、给予苏醒剂或注射强心剂、咖啡因、肾上腺素、可拉明等，也可以静脉注射5%温热的葡萄糖溶液。第四十一张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月一、小鼠的给药方法：(一)灌胃给药（经口给药）原理：将药液直接注入小鼠的胃内。器材：小鼠灌胃针1支、注射器1支、小鼠饲养盒+面罩1套、生理盐水、烧杯。第四节第四节 给药方法给药方法第四十二张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 方法步骤：1、将灌胃针连接在注射器上，吸入一定量的药液。2、左手捉持小鼠，使小鼠头部向上。3、右手将灌胃针头尖端从
23、小鼠口角处进针放进小鼠口咽部，顺咽后壁轻轻往下推，灌胃针会顺着食管滑入小鼠的胃内。灌胃针插入约3cm.4、用右手食指将针栓慢慢往下压，将注射器中的药液灌入小鼠的胃中。第四十三张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月最大剂量：最大剂量：0.4ml0.4ml10g10g体重体重。注意：在灌胃过程中，避免误插入气管。注意：在灌胃过程中，避免误插入气管。第四十四张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月（二）注射给药1、皮下注射给药：原理：将药液注入皮下结缔组织，经毛细血管、淋巴管吸收进入血液循环。器材：1m1注射器1支、生理盐水、烧 杯、酒精、碘酒、棉球。第四十五张，PPT共一百一十二页，
24、创作于2022年6月 方法步骤：方法步骤：(1)(1)注射部位：选小鼠项背部的皮下。注射部位：选小鼠项背部的皮下。(2)(2)常规消毒注射部位的皮肤，用注射针头取一常规消毒注射部位的皮肤，用注射针头取一锐角角度锐角角度刺入皮下，刺入皮下，(3)(3)将针头轻轻向左右将针头轻轻向左右摆动，摆动，易摆动易摆动则表示已则表示已刺入皮下，再轻轻刺入皮下，再轻轻抽吸抽吸，如无回血，可缓慢地将如无回血，可缓慢地将药物注入皮下。药物注入皮下。注射量：注射量：0.01ml0.01ml0.03ml0.03mlg g体重。体重。第四十六张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月2、肌肉注射给药 原理：将药液注
25、入动物的肌肉组织，经毛细血管吸收进入血液循环。器材：1ml注射器1支、生理盐水、烧杯、酒精、碘酒、棉球。第四十七张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月方法步骤方法步骤：(1)(1)操作时操作时1 1人先将小鼠捉持保定好。人先将小鼠捉持保定好。(2)(2)另另1 1人用左手抓住小鼠的人用左手抓住小鼠的1 1条后肢，右手拿条后肢，右手拿注射器，常规消毒注射部位的皮肤。注射器，常规消毒注射部位的皮肤。(3)(3)将注射器针头在动物后将注射器针头在动物后肢肢大腿外侧肌肉丰富处呈大腿外侧肌肉丰富处呈6060度角度角迅速刺入后注入药液。迅速刺入后注入药液。注射量：注射量：0.01m10.01m1g
26、 g体重。体重。第四十八张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月3 3、静脉注射给药、静脉注射给药 原理：将药液注入小鼠的尾静脉。原理：将药液注入小鼠的尾静脉。器材：器材：1m11m1注射器注射器1 1支、生理盐水、烧支、生理盐水、烧杯、金属笼或小鼠固定器杯、金属笼或小鼠固定器 、酒精、碘、酒精、碘酒、棉球。酒、棉球。第四十九张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 方法步骤：(1)将小鼠放在金属笼或小鼠固定器中，通过金属笼或小鼠固定器的孔拉出小鼠尾巴。(2)用左手捏住小鼠尾巴中部，用75酒精棉球反复擦拭尾部。(3)注射时，以左手拇指和中指捏住鼠尾两侧，用食指从下面托起尾巴，以无名
27、指夹住尾巴的末梢。(4)右手持4号针头的注射器，使针头与静脉平行（小于30度角）。第五十张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月(5)(5)从小鼠尾巴下从小鼠尾巴下1 14 4处进针，仔细观察，处进针，仔细观察，如果无阻力，无白色皮丘出现，说明如果无阻力，无白色皮丘出现，说明 已刺入血管，即可注入药物。已刺入血管，即可注入药物。(6)(6)拔出针头后，用干棉球压住注射部位拔出针头后，用干棉球压住注射部位 约约l l、2min2min，防止出血。，防止出血。注射量：注射量：0.05m10.05m10.025 m10.025 m1g g体重。体重。第五十一张，PPT共一百一十二页，创作于20
28、22年6月 4 4、腹腔注射给药、腹腔注射给药 原理：将药液注入小鼠的腹腔。原理：将药液注入小鼠的腹腔。器材：注射器器材：注射器1 1支、生理盐水、烧杯、支、生理盐水、烧杯、酒精、碘酒、棉球。酒精、碘酒、棉球。第五十二张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 方法步骤：方法步骤：(1)(1)用左手将小鼠捉持保定，使鼠腹部用左手将小鼠捉持保定，使鼠腹部 朝上，鼠头略低于尾部。朝上，鼠头略低于尾部。(2)(2)右手持注射器将针头在下腹部靠近右手持注射器将针头在下腹部靠近 腹白线的两侧进行穿刺。腹白线的两侧进行穿刺。第五十三张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月(3)(3)针头刺入皮下
29、后进针针头刺入皮下后进针3mm3mm左右，接着使左右，接着使注射针头与皮肤呈注射针头与皮肤呈4545度角刺入腹肌，穿过腹度角刺入腹肌，穿过腹肌进入腹膜腔，当针尖穿过腹肌进入腹膜腔肌进入腹膜腔，当针尖穿过腹肌进入腹膜腔后抵抗感消失。后抵抗感消失。(4)(4)固定针头，保持针尖不动，固定针头，保持针尖不动，回抽针栓，如无回血、肠液回抽针栓，如无回血、肠液和尿液后即可注射药液。和尿液后即可注射药液。注射量：注射量：0.5m10.5m11m11m1只只。第五十四张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月二、大鼠的给药方法：二、大鼠的给药方法：(一一)灌胃给药灌胃给药 原理：将药液直接注入大鼠的胃内
30、。原理：将药液直接注入大鼠的胃内。器材：大鼠灌胃针器材：大鼠灌胃针1 1支、注射器支、注射器1 1支、大鼠支、大鼠 饲养盒饲养盒+面罩面罩l l套、生理盐水、烧杯。套、生理盐水、烧杯。第五十五张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月方法步骤：方法步骤：1 1、将灌胃针连接在注射器上，吸入一定量、将灌胃针连接在注射器上，吸入一定量的药液。的药液。2 2、左手捉持保定大鼠，右手将灌胃针头尖、左手捉持保定大鼠，右手将灌胃针头尖端放进大鼠口咽部，顺咽后壁轻轻往下推，端放进大鼠口咽部，顺咽后壁轻轻往下推，灌胃针会顺着食管滑入大鼠的胃内。灌胃针会顺着食管滑入大鼠的胃内。灌胃针插入约灌胃针插入约5cm
31、.5cm.第五十六张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 3 3、用右手食指将针栓慢慢往下压，将注、用右手食指将针栓慢慢往下压，将注射器中的生理盐水灌入大鼠的胃中。射器中的生理盐水灌入大鼠的胃中。剂量：剂量：2ml2ml100g g体重体重。注意：在灌胃过程中，避免误插入气管。注意：在灌胃过程中，避免误插入气管。第五十七张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月(二二)注射给药注射给药 1 1、皮下注射给药、皮下注射给药 原理：将药液注入皮下结缔组织，经毛细原理：将药液注入皮下结缔组织，经毛细 血管、淋巴管吸收进入血液循环。血管、淋巴管吸收进入血液循环。器材：器材：5ml5ml注射
32、器注射器1 1支、生理盐水、烧杯、支、生理盐水、烧杯、酒精、碘酒、棉球。酒精、碘酒、棉球。第五十八张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 方法步骤方法步骤：(1)(1)注射部位：选大鼠的项背部的皮下。注射部位：选大鼠的项背部的皮下。(2)(2)常规消毒注射部位的皮肤，用注射针头取一锐角角度刺入皮下。常规消毒注射部位的皮肤，用注射针头取一锐角角度刺入皮下。(3)(3)将将针针头头轻轻轻轻向向左左右右摆摆动动，易易摆摆动动则则表表示示已已刺刺入入皮皮下下，再再轻轻轻轻抽抽吸吸，如如无无回回血，可缓慢地将药物注入皮下。血，可缓慢地将药物注入皮下。注射量：注射量：0.01ml0.01mlg g
33、体重。体重。第五十九张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月2 2、肌肉注射给药、肌肉注射给药 原理：将药液注入动物的肌肉组织，经原理：将药液注入动物的肌肉组织，经 毛细血管吸收进入血液循环。毛细血管吸收进入血液循环。器材：器材：1m11m1注射器注射器1 1支、生理盐水、烧杯、支、生理盐水、烧杯、酒精、碘酒、棉球。酒精、碘酒、棉球。第六十张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 方法步骤：方法步骤：(1)(1)操作时操作时1 1人先将大鼠捉持保定好。人先将大鼠捉持保定好。(2)(2)另另1 1人用左手抓住大鼠的人用左手抓住大鼠的1 1条后肢，右手拿条后肢，右手拿注射器，常规消毒注
34、射部位的皮肤。注射器，常规消毒注射部位的皮肤。(3)(3)将注射器针头在动物后肢大腿内侧肌肉丰将注射器针头在动物后肢大腿内侧肌肉丰富处呈富处呈9090度角，迅速刺入后注入药液。度角，迅速刺入后注入药液。注射量：注射量：0.5m1-1m10.5m1-1m1。第六十一张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 3 3、静脉注射给药、静脉注射给药 原理：将药液注入大鼠的尾静脉。原理：将药液注入大鼠的尾静脉。器材：器材：1ml1ml注射器注射器1 1支、生理盐水、烧杯、支、生理盐水、烧杯、金属笼或大鼠固定器、酒精、碘酒、棉球。金属笼或大鼠固定器、酒精、碘酒、棉球。第六十二张，PPT共一百一十二页，
35、创作于2022年6月 方法步骤：方法步骤：(1)(1)将大鼠放在金属笼或大鼠固定器中，通过金属笼或鼠夹的孔拉出大将大鼠放在金属笼或大鼠固定器中，通过金属笼或鼠夹的孔拉出大鼠尾巴。鼠尾巴。(2)(2)用左手捏住大鼠尾巴中部，用用左手捏住大鼠尾巴中部，用7575酒精棉球反复擦拭尾部。酒精棉球反复擦拭尾部。(3)(3)注射时，以左手拇指和中指捏住鼠尾两侧，用食指从下面托起尾巴。注射时，以左手拇指和中指捏住鼠尾两侧，用食指从下面托起尾巴。第六十三张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 (4)(4)右手持右手持4 4号针头的注射器，使针头与静脉平行号针头的注射器，使针头与静脉平行(小于小于303
36、0度角度角)。（5)5)从从大大鼠鼠尾尾巴巴下下1 14 4或或1 13 3处处进进针针，仔仔 细细观观察察，如如果果无无阻阻力力，无无白白色皮丘出色皮丘出 现，说明已刺入血管，即可注入药物。现，说明已刺入血管，即可注入药物。注射量：注射量：0.050.050.25 ml0.25 ml10g10g体重。体重。第六十四张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 4 4、腹腔注射给药、腹腔注射给药 原理：将药液注入大鼠的腹腔。原理：将药液注入大鼠的腹腔。器材：注射器器材：注射器1 1支、生理盐水、烧杯。支、生理盐水、烧杯。第六十五张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 方法步骤：方法步
37、骤：(1)(1)用左手将大鼠捉持保定，使鼠腹部朝用左手将大鼠捉持保定，使鼠腹部朝上，鼠头略低于尾部。上，鼠头略低于尾部。(2)(2)右手持注射器将针头在下腹部靠近腹右手持注射器将针头在下腹部靠近腹白线的两侧进行穿刺。白线的两侧进行穿刺。第六十六张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月(3)(3)针针头头刺刺入入皮皮下下后后进进针针3mm3mm左左右右，接接着着使使注注射射针针头头与与皮皮肤肤呈呈4545度度角角刺刺入入腹腹肌肌，穿过腹肌进入腹膜腔，当针尖穿过腹肌进入腹膜腔后抵抗感消失。穿过腹肌进入腹膜腔，当针尖穿过腹肌进入腹膜腔后抵抗感消失。(4)(4)固定针头，保持针尖不动，固定针头，
38、保持针尖不动，回抽针栓，如无回血、肠液回抽针栓，如无回血、肠液和尿液后即可注射药液。和尿液后即可注射药液。注射量：注射量：0.010.010.02m10.02m1g g体重。体重。第六十七张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第六十八张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第六十九张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第七十张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第七十一张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第七十二张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第七十三张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第七十四张，PPT共一百一十二页，创作于20
39、22年6月第七十五张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第七十六张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第七十七张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第七十八张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月三、豚鼠的给药方法三、豚鼠的给药方法：(一一)灌胃给药灌胃给药 原理：将药液直接注入豚鼠的胃内。原理：将药液直接注入豚鼠的胃内。器材：灌胃针器材：灌胃针1 1支、注射器支、注射器1 1支、支、生理盐水、烧杯。生理盐水、烧杯。第七十九张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 方法步骤：方法步骤：1 1、将灌胃针连接在注射器上，吸入一定、将灌胃针连接在注射器上，吸入一定
40、 量的生理盐水。量的生理盐水。2 2、左手捉持保定豚鼠，右手将灌胃针头、左手捉持保定豚鼠，右手将灌胃针头 尖端放进豚鼠口咽部，顺咽后壁轻轻尖端放进豚鼠口咽部，顺咽后壁轻轻 往下推，灌胃针会顺着食管滑入大鼠往下推，灌胃针会顺着食管滑入大鼠 的胃内。的胃内。灌胃针插入约灌胃针插入约5cm5cm。第八十张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月3 3、用右手食指将针栓慢慢往下压，将、用右手食指将针栓慢慢往下压，将注射器中的生理盐水注入豚鼠的胃中。注射器中的生理盐水注入豚鼠的胃中。剂量：剂量：1 15ml5ml。注意：在灌胃过程中，避免误插入气管。注意：在灌胃过程中，避免误插入气管。第八十一张，P
41、PT共一百一十二页，创作于2022年6月 (二二)注射给药注射给药 1 1、皮下注射给药、皮下注射给药原理：原理：将药液注入皮下结缔组织，经毛细血将药液注入皮下结缔组织，经毛细血管、淋巴管吸收进入血液循环。管、淋巴管吸收进入血液循环。器材：器材：1m11m1注射器注射器1 1支、生理盐水、烧杯、酒支、生理盐水、烧杯、酒精、碘酒、棉球。精、碘酒、棉球。第八十二张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 方法步骤：方法步骤：(1)(1)注射部位：选豚鼠的项背部的皮下。注射部位：选豚鼠的项背部的皮下。(2)(2)常规消毒注射部位的皮肤，注射针头常规消毒注射部位的皮肤，注射针头 取一锐角角度刺入皮
42、下。取一锐角角度刺入皮下。(3)(3)将针头轻轻向左右摆动，易摆动则将针头轻轻向左右摆动，易摆动则 表示已刺入皮下，再轻轻抽吸，如表示已刺入皮下，再轻轻抽吸，如 无回血，可缓慢地将药物注入皮下。无回血，可缓慢地将药物注入皮下。注射量：注射量：0.01ml0.01mlg g。第八十三张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 2 2、肌肉注射给药、肌肉注射给药 原理：将药液注入动物的肌肉组织，经原理：将药液注入动物的肌肉组织，经 毛细血管吸收进入血液循环。毛细血管吸收进入血液循环。器材：器材：1m11m1注射器注射器1 1支、生理盐水、烧杯、支、生理盐水、烧杯、酒精、碘酒、棉球。酒精、碘酒、
43、棉球。第八十四张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 方法步骤：方法步骤：(1)(1)操作时操作时1 1人先将豚鼠捉持保定好。人先将豚鼠捉持保定好。(2)(2)另另1 1人用左手抓住豚鼠的人用左手抓住豚鼠的1 1条后肢，条后肢，右手拿注射器，常规消毒注射部位。右手拿注射器，常规消毒注射部位。(3)(3)将注射器针头在动物后肢大腿外侧将注射器针头在动物后肢大腿外侧 肌肉丰富处呈肌肉丰富处呈6060度角，迅速刺入后度角，迅速刺入后 注入药液。注入药液。注射量：注射量：0.01ml0.01mlg g。第八十五张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 四、兔的给药方法四、兔的给药方法 (
44、一一)灌胃给药灌胃给药 原理：将药液直接注入兔的胃内。原理：将药液直接注入兔的胃内。器材：兔开口器、器材：兔开口器、1414号胃管、注射器号胃管、注射器1 1支、支、生理盐水、烧杯、石蜡油。生理盐水、烧杯、石蜡油。第八十六张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 步骤：步骤：1 1、将兔放进保定架内，助手用手轻轻压住兔的背部，避免兔的挣扎。、将兔放进保定架内，助手用手轻轻压住兔的背部，避免兔的挣扎。2 2、灌胃者用在手拇指和中指挤压兔两颊，将下颌挤开使兔被动张口。、灌胃者用在手拇指和中指挤压兔两颊，将下颌挤开使兔被动张口。3 3、右手将开口器从一侧口角插入口腔并固定。、右手将开口器从一侧
45、口角插入口腔并固定。4 4、用泡在石蜡油中的胃管，经开口器的孔插入，向前推进约、用泡在石蜡油中的胃管，经开口器的孔插入，向前推进约15cm15cm，可达胃内。，可达胃内。5 5、在插管时应将胃管另一端泡在水中确认没有冒气泡，即可用注射器经胃管注入药液。、在插管时应将胃管另一端泡在水中确认没有冒气泡，即可用注射器经胃管注入药液。第八十七张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月灌胃量：灌胃量：80-100ml80-100ml只次。只次。注注 意意：在灌胃过程中，：在灌胃过程中，避免误插入气管。避免误插入气管。第八十八张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月三、兔耳缘静脉或兔耳中央动脉穿
46、刺三、兔耳缘静脉或兔耳中央动脉穿刺 （用于兔的给药、抽血）：（用于兔的给药、抽血）：原理：穿刺兔的耳缘静脉或耳中央动脉。原理：穿刺兔的耳缘静脉或耳中央动脉。器材：兔保定架、注射器器材：兔保定架、注射器1 1支、生理盐水、支、生理盐水、烧杯、酒精、碘酒、棉球。烧杯、酒精、碘酒、棉球。第八十九张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 方法步骤方法步骤：(1)(1)将兔放在保定架内保定。将兔放在保定架内保定。(2)(2)酒精消毒并揉搓血管，酒精消毒并揉搓血管，使兔的耳缘静脉或耳中央动使兔的耳缘静脉或耳中央动脉充盈。脉充盈。第九十张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月(3)(3)用左手食
47、指和中指夹住兔的耳缘静脉或用左手食指和中指夹住兔的耳缘静脉或耳中央动脉近心端，拇指和小指夹住耳郭边耳中央动脉近心端，拇指和小指夹住耳郭边缘部分，无名指和小指放在耳郭下作垫。缘部分，无名指和小指放在耳郭下作垫。(4)(4)右手拿注射器，针尖的斜面朝上，将针右手拿注射器，针尖的斜面朝上，将针头插入血管，放松对静脉近心端的压迫，缓头插入血管，放松对静脉近心端的压迫，缓慢把地药液注射进血管，或将血液抽出来。慢把地药液注射进血管，或将血液抽出来。注射或采血量：注射或采血量：5 5一一10ml10ml。第九十一张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 五、吸入给药 1、气管内滴注法 2、经口腔和经气
48、管给药法 3、吸入室法 大小鼠气管插管技术 六、经肠给药1、兔直肠给药 2、麻醉后小肠或十二指肠灌注给药 第九十二张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 一、小鼠的采血一、小鼠的采血摘除眼球采血法摘除眼球采血法：原理：将小鼠的眼球摘除后取血液的方法。原理：将小鼠的眼球摘除后取血液的方法。器材：眼科弯镊、试管。器材：眼科弯镊、试管。第五节第五节 样品采集方法样品采集方法第九十三张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月方法步骤方法步骤 (1)左手抓住小鼠颈部皮肤，轻压在实验台上，取侧卧位;(2)左手食指尽量将小鼠眼周皮肤往颈后压，使眼球突出。(3)用眼科弯镊夹去眼球，将鼠倒立，用试管
49、接住流出的血液。(4)采血完毕立即用纱布压迫止血。采血量：每次0.6-1.0ml/次。小鼠眼内眦取血动画小鼠眼眶后静脉丛取血 第九十四张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 二、大鼠的采血二、大鼠的采血 眼眶后静脉丛眼眶后静脉丛(窦窦)取血：取血：器材：器材：毛细管毛细管(玻璃或塑料均可玻璃或塑料均可)、1 1肝素溶液、干燥皿、肝素溶液、干燥皿、乙醚、试管、干棉球。乙醚、试管、干棉球。第九十五张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月 方法步骤：方法步骤：1、先将毛细管浸泡在1肝素溶液中数分钟，然后取出干燥备用。2、将大鼠进行麻醉，使大鼠保持侧卧位。3、左手拇指、食指抓住两鼠耳之间
50、的颈部头皮，并轻轻向下压迫颈部两侧，致大鼠静脉血回流障碍，眼球外突，眶后静脉丛充血。4、右手持毛细管由大鼠的内毗部插入结膜，使毛细管与眶壁平行地向喉头方向推进，深度约35mm。5、轻轻旋动毛细管，使其穿破静脉丛，让血流顺毛细管流出。采血量：0.40.6ml次。第九十六张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第九十七张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第九十八张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第九十九张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第一百张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月第一百零一张，PPT共一百一十二页，创作于2022年6月三、豚鼠采血方法