细胞冻存的方法与步骤16105.pdf

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1、 细胞冻存的方法与步骤 文件编码(GHTU-UITID-GGBKT-POIU-WUUI-8968)细胞冻存、解冻方法与细胞计数 江苏大学附属医院风湿科 李晶?一、细胞冷冻保存 1.材料:生长良好之培养细胞、新鲜培养基、DMSO(SigmaD-2650)、无菌塑料冷冻保存管(Nalgene 5000-0020)、0.4(w/v)trypanblue(GibcoBRL15250-061)、血球计数盘与盖玻片、等速降温机(KRYO10SeriesII)2、冷冻保存方法:(1)传统方法:冷存管置于 410 分钟-2030 分钟-801618 小时(或隔夜)-液氮槽 vaporphase 长期储存。-2

2、0不可超过 1 小时,以防止胞内冰晶过大,造成细胞大量死亡,亦可跳过此步骤直接放入-80冰箱中,惟存活率稍微降低一些。(2)程序降温:利用已设定程序的等速降温机以-1-3/分钟之速度由室温降至(-80以下)-120,再放在液氮槽 vaporphase 长期储存。适用于悬浮型细胞与 hybridoma 之保存。3、步骤:(1)冷冻前 24-48 小时更换半量或全量培养基,使细胞处于指数生长期。(2)配制冷冻保存溶液(使用前配制):另取一离心管,加入培养基、血清,逐滴加入二甲基亚砜(DMSO)至 20%浓度,即制成双倍的冻存液,置于室温下待用。(3)离心收集培养之细胞,用加血清的培养基重悬起细胞,

3、取少量细胞悬浮液(约 0.1ml)计数细胞浓度及冻前存活率。(4)取与细胞悬液等量的冻存液,缓慢逐滴加入细胞悬液,并晃动试管,制成细胞冻存悬液(DMSO 最后浓度为 510),使细胞浓度为 15106cells/ml,混合均匀,分装于已标示完全之冷冻保存管中,12ml/vial,并取少量细胞悬浮液作污染检测。严密封口后,注明细胞名称、代数、日期。然后进行冻存。4、注意事项:(1)欲冷冻保存之细胞应在生长良好(logphase)且存活率高之状态,约为 8090致密度。冷冻前检测细胞是否仍保有其特有性质,例如 hybridoma 应在冷冻保存前一至二日测试是否有抗体之产生。(2)细胞在液氮中可长期

4、冻存无限时间,而不会影响细胞活力;在-70 度可保存数月。(3)注意冷冻保护剂之品质。DMSO 应为试剂级等级,无菌且无色(以 0.22micron FGLP Telflon 过滤或是直接购买无菌产品,如 SigmaD-2650),以 510ml 小体积分装,4避光保存,勿作多次解冻。Glycerol 亦应为试剂级等级,以高压蒸汽灭菌后避光保存。在开启后一年内使用,因长期储存后对细胞会有毒性。本方法中先制备双倍冻存液,可避免 DMSO 直接加入时释放的热量对细胞的损伤。缓慢逐滴加入细胞悬液是使细胞逐步适应高渗,可降低细胞受损。DMSO 可能引起部分白血病细胞株的分化,可换用 10%甘油冻存。(

5、4)冷冻保存之细胞浓度:normalhumanfibroblast:13106cells/ml hybridoma:13106cells/ml,细胞浓度不要太高,某些 hybridoma 会因冷冻浓度太高而在解冻 24 小时后死去。adherenttumorlines:57106,依细胞种类而异。Adenocarcinoma 解冻后须较高之浓度,而 HeLa 只需 13106cells/ml othersuspensions:510106cells/ml,humanlymphocyte 须至少 5106cells/ml。(5)冷冻保护剂浓度为 5 或 10DMSO,若是不确定细胞之冷冻条件,在

6、做冷冻保存之同时,亦应作一个 backupculture,以防止冷冻失败。(6)冻存可用 10%90%的血清,一般高浓度血清有助于维护细胞活力,此处介绍 20%终浓度有利于细胞悬浮而少沉积(4 度时),复苏存活率在 80%90%以上,对原代培养细胞,以90%血清冻存更为有效。?二、冷冻细胞活化 1、冷冻细胞之活化原则为快速解冻,以避免冰晶重新结晶而对细胞造成伤害,导致细胞之死亡。2、细胞活化后,约需数日,或继代一至二代,其细胞生长或特性表现才会恢复正常(例如产生单株抗体或是其它蛋白质)。3、材料 37恒温水槽、新鲜培养基、无菌吸管/离心管/培养瓶、液氮或干冰容器 4、步骤:(1)操作人员应戴防

7、护面罩及手套,防止冷冻管可能爆裂之伤害。(2)自液氮或干冰容器中取出冷冻管,检查盖子是否旋紧,由于热胀冷缩过程,此时盖子易松掉。(3)将新鲜培养基置于 37水槽中回温,回温后喷以 70%酒精并擦拭之,移入无菌操作台内。(4)取出冷冻管,立即放入 37水槽中快速解冻,轻摇冷冻管使其在 1 分钟内全部融化,以 70%酒精擦拭保存管外部,移入无菌操作台内。(5)取出解冻之细胞悬浮液,缓缓加入有培养基之培养容器内(稀释比例为 1:101:15),混合均匀,放入 CO2 培养箱培养。取 0.1ml 解冻细胞悬浮液作存活测试。(6)解冻后是否立即去除冷冻保护剂(例如 DMSO 或 glycerol),依细

8、胞种类而异,一般而言,大都不需要立即去除冷冻保护剂。惟若要立即去除,则将解冻之细胞悬浮液加入含有 5-10ml 培养基之离心管内,离心 1000rpm,5 分钟,移去上清液,加入新鲜培养基,混合均匀,放入 CO2 培养箱培养。(7)若不需立即去除冷冻保存剂,则在解冻培养后隔日更换培养基。三、细胞计数与存活测试 1、原理:(1)计算细胞数目可用血球计数盘或是 Coultercounter 粒子计数器自动计数。(2)血球计数盘一般有二个 chambers,每个 chamber 中细刻 9 个 1mm2大正方形,其中 4个角落之正方形再细刻 16 个小格,深度均为 0.1mm。当 chamber 上

9、方盖上盖玻片后,每个大正方形之体积为 1mm20.1mm=1.0 x10-4ml。使用时,计数每个大正方形内之细胞数目,乘以稀释倍数,再乘以 104,即为每 ml 中之细胞数目。(3)存活测试之步骤为 dyeexclusion,利用染料会渗入死细胞中而呈色,而活细胞因细胞膜完整,染料无法渗入而不会呈色。一般使用蓝色之 trypanblue 染料,如果细胞不易吸收trypanblue,则用红色之 Erythrosinbluish。计算细胞活率:活细胞数/(活细胞数+死细胞数)100%。计数应在台盼兰染色后数分钟内完成,随时间延长,部分活细胞也开始摄取染料;因为台盼兰对蛋白质有很强的亲和力,用不含

10、血清的稀释液,可以使染色计数更为准确。2、材料:0.4%w/vtrypanblue(GibcoBRL15250-061);Erythosinbluishstain;取0.1gramErythrosinbluish(SigmaE-9259)及 0.05grampreservativemethylparaben(SigmaH-3647)溶于 100mlCa+/Mg+freesaline;血球计数盘及盖玻片(Hemocytometerandcoverslip);计数器(counter);低倍倒立显微镜;粒子计数器(Coultercounter,CoulterElectronics)。白细胞稀释液(4

11、%乙酸溶液)。3、步骤:(1)取 50l 细胞悬浮液与 50ltrypanblue(orErythrosinbluish)等体积混合均匀于1.5ml 小离心管中。(2)取少许混合液(约 15l)自血球计数盘 chamber 上方凹槽加入,盖上盖玻片,于 100倍倒立显微镜下观察,活细胞不染色,死细胞则为蓝色(或红色-Erythrosinbluish)。(3)计数四个大方格之细胞总数,再除 4,乘以稀释倍数(至少乘以 2,因与 trypanblue等体积混合),最后乘以 104,即为每 ml 中细胞悬浮液之细胞数。若细胞位于线上,只计上线与右线之细胞(或计下线与左线之细胞)。注:4 大格细胞总数

12、稀释倍数104/4=细胞数/ml;每一大格的体积=0.1cm0.1cm0.01cm=10-4ml 计数板计数时,最适浓度为 510105细胞/ml,此范围外计数误差偏大。高浓度细胞悬液,可取出部分作稀释或连续稀释后计数。5、范例:T75monolayerculture 制成 10ml 细胞悬浮液,取 0.1ml 溶液与 0.1mltrypanblue 混合均匀于试管中,取少许混合液加入血球计数盘,计数四大方格内之细胞数目。活细胞数/方格:55,62,49,59;死细胞数/方格:5,3,4,6;细胞总数=243 平均细胞数/方格=60.75;稀释倍数=2;细胞数/ml:60.751042(稀释倍数)=1.22106;细胞数/flask(10ml):1.2210610ml=12.2106 存活率:225/24392.6%

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