研究FMR1基因敲除雌鼠生殖功能的变化及机制,病理学论文.docx

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1、研究FMR1基因敲除雌鼠生殖功能的变化及机制,病理学论文脆性X综合征fragileXsyndrome,FXS是常见的X连锁先天性智力低下疾病,FMR1fragileXmentalretardation1,FMR1基因的突变或缺失可导致FXS。FMR1基因敲除小鼠KO鼠与FXS患者有很多类似的异常感觉和状态,包括不同程度的智力低下、巨睾症等,是研究FXS成熟的动物模型。神经肽YneuropeptideY,NPY是一种含36个氨基酸的单链肽,与下丘脑神经内分泌功能密切相关,在生殖功能起重要调节作用。 -氨基丁酸 -aminobutyricacid,GABA是中枢神经系统中一种重要的抑制性神经递质,

2、对下丘脑-垂体-卵巢轴有深入的影响,介入生殖活动的调节。研究发现FXS女性20%会出现卵巢早衰,而在KO鼠的繁衍经过中亦发现其繁衍能力有改变。因而,我们旨在研究FMR1基因敲除雌鼠生殖功能的变化,并对其可能的机制进行探究。1、材料与方式方法1.1材料FMR1基因敲除小鼠FVBKO是以正常野生型FVBFVBWT小鼠为背景,利用基因敲除技术将FMR1基因定点灭活制备成人类脆性X综合征的代表性实验动物模型。该基因敲除模型鼠于2002年由广州医学院神经科学研究所从荷兰Erasmus大学实验动物科学中心引进,经广州医学院实验动物中心繁育饲养建立了该品系的清洁级种群。所有实验动物的操作及饲养均符合国家标准

3、,遵循人道原则。实验小鼠均饲养在清洁级环境中,自由进水和饮食,室内温度为2026,相对湿度为50%70%,光照明暗交替12h12h。出生后57周为小鼠性成熟期,812周为小鼠繁衍适龄期,本研究选择10周雌性小鼠为研究对象。1.2主要试剂与设备PCR试剂盒上海生工生物工程技术服务有限公司,兔抗鼠NPY多克隆抗体Abcam,豚鼠抗鼠GABA多克隆抗体Abcam、辣根过氧化物酶HRP标记的羊抗兔IgG二抗及羊抗豚鼠IgG二抗福州迈新生物技术开发有限公司,小鼠血清NPYELISA试剂盒广州市鲁诚生物科技有限公司,光学显微镜日本Olympus-BH22,酶标仪芬兰Thermo。1.3实验动物基因型鉴定按

4、文献的方式方法。1.4繁衍力试验选取成年的KO纯合子、KO杂合子及WT雌鼠分别与成年的WT雄鼠合笼,合笼比例为雌鼠:雄鼠=21,天天早上八点和下午两点观察雌鼠能否有孕栓构成,记录合笼时间和产仔数。1.5卵巢形态学观察HE染色观察卵巢形态及卵泡计数,卵泡计数方式方法参照文献。1.6免疫组化法测定下丘脑NPY、GABA的表示出免疫组织化学染色方式方法按试剂盒操作讲明书进行,DAB显色,以PBS代替一抗作为阴性对照,一样条件下已经知道阳性片作阳性对照,高倍光镜下观察切片 400,用ImageProPlus6.0图像分析软件分析其平均光密度值。平均光密度值越大,阳性表示出越强。1.7ELISA法测定血

5、清NPY水平按ELISA试剂盒讲明书步骤进行。1.8统计学处理所有的数据采用SPSS16.0软件进行分析,正态分布的计量资料以x s表示,组间均数采用单因素方差分析。P 0.05为差异有显著性。2、结果2.1实验动物基因型鉴定结果KO鼠和WT鼠分别扩增出约800bp和468bp的DNA片段,见图1。2.2繁衍力试验结果3组小鼠合笼天数及产仔数比拟,KO纯合子雌鼠产仔数少于WT雌鼠P 0.05,见表1。2.3卵巢组织形态比拟KO纯合子、KO杂合子、WT雌鼠卵巢形态未见明显不同,见图2;KO纯合子雌鼠卵泡总数少于WT雌鼠P 0.05,见表2。2.4下丘脑NPY的表示出及其平均光密度值比拟NPY在下

6、丘脑的表示出结果,见图3;KO纯合子雌鼠下丘脑NPY的表示出弱于WT雌鼠,差异有显著性P 0.05,见表3。2.5下丘脑GABA的表示出及其平均光密度比拟GABA在下丘脑的表示出结果,见图3;三种基因型小鼠下丘脑GABA的表示出差异无显著性P 0.05,见表3。2.6血清NPY表示出的比拟3组小鼠血清NPY的表示出量差异无显著性P 0.05,见表4。3、讨论FXS是X连锁不完全显性遗传病,发病率男性为1/1250,女性为1/2500,在X连锁智力低下中占40%,99%的FXS是由于脆性X智力低下基因1FMR1的动态突变引起,1%是由于FMR1基因的错义突变或缺失突变引起。FMR1基因位于X染色

7、体的长臂远端Xq27.3区的脆性部位,含17个外显子,在该基因的5 非翻译区存在一段数目可变的CGGn重复序列,其上游250bp处存在一CpG岛。CGGn构造的重复扩增会造成CpG岛的异常甲基化,进而关闭FMR1基因的转录,导致其编码的脆性x智力低下蛋白FMRP的表示出减少或缺失,进而引起一系列的临床表现,主要表现为智力低下、自闭症、认知障碍、女性成年期卵巢早衰及男性青春期后大睾丸。FMR1基因敲除小鼠是在FMR1基因的第5个外显子中插入了一个新霉素表示出片断,进而阻断了500bpDNA片断的扩增,导致FM-RP表示出的缺失而制备成FXS的动物模型,其活动过度,学习记忆力减退,易激惹,青春期后

8、睾丸增大,是研究FXS成熟的动物模型。近年来已有文献报告FMR1基因的缺失对小鼠的生殖功能有影响,祝亚桥等研究发现KO雄鼠的生育能力和WT小鼠相比是降低的,但两者的精子生成量、精子存活率、精子畸形率及血清性激素水平无差异不同,考虑为KO雄鼠的脑部病变,或与勃起相关的因素改变而引起。在对雌性FMR1基因敲除小鼠生殖功能的研究中戴丽军等应用10u孕马血清促性腺激素PMSG和10u人绒毛膜促性腺激素HCG对10周的FVB.KO和FVB.WT雌鼠超排卵处理后,血清性激素水平和超排卵数差异均无显著性P 0.05,提示超排不影响FMR1基因敲除小鼠的繁衍性能。同时该研究发现FVB.KO的产仔数较FVB.W

9、T是降低。以上的研究均提示FMR1基因的缺失降低了小鼠的生育率,但对其影响机制未作进一步的研究,本实验除了应用产仔数这一传统指标对FMR1基因敲除小鼠的繁衍性能进行评估外,更运用了卵泡计数这一更直观的证据加以讲明,在他们研究的基础上本实验着重讨论FMR1基因是通过何种机制来影响小鼠的生殖功能的。本研究显示成年的KO纯合子、KO杂合子、WT雌鼠与成年的WT雄鼠合笼,KO纯合子雌鼠的产仔数少于WT雌鼠,P 0.05,这与前人的研究结果一样。HE染色观察3种基因型雌鼠的卵巢形态发现:卵巢皮质、髓质层次分明,原始卵泡、初级卵泡、次级卵泡、成熟卵泡及黄体均可见,原始卵泡、次级卵泡较多,另可见少量闭锁卵泡

10、及间质腺,3组间其卵巢形态未见明显不同。3组间卵泡总数比拟发现:KO纯合子雌鼠的卵泡总数少于WT雌鼠,P 0.05。卵泡数目是反映卵巢储备的重要的指标,卵泡数目的减少标志着生殖功能的下降。这一结果同样支持KO纯合子雌鼠的生育功能是下降的,而实验未发现KO杂合子雌鼠的生殖功能有下降,这讲明FMR1基因的完全缺失可能才会影响其生殖功能,其详细机制有待于进一步研究。KO纯合子雌鼠的生育功能是下降的,那么FMR1基因是通过何种途径来调节其生殖功能的呢?NPY是一种含36个氨基酸的单链肽,与下丘脑神经内分泌功能等生理经过的调节密切相关,NPY可影响下丘脑-垂体-卵巢轴的活动,对排卵前LH峰的构成有促进作

11、用,NPY表示出的下降可引起LH峰构成不良,进而影响排卵。NPY还可影响Ca2+的浓度而调节卵巢的血流,进而影响卵泡的发育。本研究发如今KO鼠的中枢神经系统中,下丘脑室周核、正中隆起、下丘脑外侧区、弓状核、背侧区及腹内侧核均可见NPY阳性细胞的表示出,正中隆起、下丘脑弓状核及背侧区这些与生殖调节密切相关的区域,其NPY表示出更强烈,3种基因型雌鼠其NPY表示出部位无明显不同,经统计,KO纯合子雌鼠下丘脑NPY的表示出弱于WT雌鼠,这提示FMR1基因可能是通过下调NPY的表示出来调节雌鼠生殖功能的。GABA是中枢神经系统重要的抑制性神经递质,通过下丘脑-垂体-性腺轴影响垂体和性腺的生理机能,可以

12、以通太多巴胺系统抑制LH和PRL的分泌,对生殖功能有重要的调节作用。本研究发现GABA阳性细胞在下丘脑弓状核、室周核、腹内侧核背部和腹部以及下丘脑背侧区均有表示出。在下丘脑弓状核和室周核GABA表示出更强烈,3种基因型雌鼠其GABA表示出部位未见明显不同。经统计,3种基因型雌鼠其下丘脑GABA的表示出量差异亦无显著性,提示FMR1基因可能不是直接调节GABA来影响其生殖功能的,而可能是通过GABA受体信号通路。NPY和GABA在下丘脑均有表示出,且在弓状核两者表示出均更强烈,NPY和GABA均可调节生殖功能,但NPY和GABA能否能够互相调节进而影响生殖功能,还有待于进一步的研究。本实验初步讨

13、论了FMR1基因的缺失对雌鼠生育功能的影响,下一步将研究FMR1基因是怎样调控NPY的表示出及GA-BA受体信号通路在KO鼠中的作用。参 考 文 献:1 GANTOIS I, BAKKER CE, REYNIERS E, et al. Restoring thephenotype of fragile X syndrome: insight from the mouse modelJ. Curr Mol Med, 2001, 1(4): 447-455.2 BAKKER CE, VERHEIJ C, REYNIERS E, et al. Fmrl knockoutmice: a model t

14、o study fragile X mental retardationJ. Cell, 1994,78(1): 23-33.3 XU J, KIRIGITI MA, COWLEY MA, et al. Suppression of basalspontaneous gonadotropin-releasing hormone neuronal activityduring lactation: role of inhibitory effects of neuropeptide YJ.Endocrinology, 2018, 150(1): 333-340.4 HRABOVSZKY E, M

15、OLNAR CS, NAGY R, et al. Glutamatergicand GABAergic innervation of human gonadotropin-releasing hor-mone-I neuronsJ. Endocrinology, 2020, 153(6): 2766-2776.5 MACHADO-FERREIRA MC, COSTA-LIMA MA, BOY RT, eta1. Premature ovarian failure and FRAXA permutation :Positivecorrelation in a Brazilian survey J

16、. Am J Med Genet, 2004,126A(3): 237-240.6 邢 州,孙卫文,黄月玲,等.使用 PCR 方式方法检测 Fmr1 基因敲除小鼠基因型J.当代医院,2018,9(5):12.6 XING Z, SUN WW, HUANG YL, et al . Detection of genotypeof Fmr1 gene Knocked out mice by using PCRJ. J ModernHosp, 2018, 9(5): 12. Chinese7 MYERS M, BRITT KL, WREFORD NG, et al. Methods forquanti

17、fying follicular numbers within the mouse ovaryJ. Repro-duction, 2004, 127(5): 569-580.8 ACOG Committee Opinion. No. 338: Screening for fragile X syn-dromeJ. Obstet Gynecol, 2006, 107(6): 1483-1485.9 COFFEE RL JR, TESSIER CR, WOODRUFF EA, et al. FragileX mental retardation protein has a unique, evol

18、utionarily con-served neuronal function not shared with FXR1P or FXR2PJ.Dis Model Mech, 2018, 3(7-8): 471-485.10 祝亚桥,周 兴,陈盛强.FMR1 基因敲除对雄性小鼠生殖功能的影响J.实用医学杂志,2020,28(4):564-567.10 ZHU YQ, ZHOU X, CHEN SQ. The influence of FMR1 geneknockout on the reproduction of male miceJ. Journal of Prac-tical Medici

19、ne, 2020, 28(4): 564-567. Chinese11 戴丽军,廖 军,黄月玲,等.Fmr1 基因敲除小鼠血清雌性激素含量的比拟研究J.中国比拟医学杂志,2006,16(8):459-462.11 DAI LJ, LIAO J, HUANG YL, et al . FSH, LH, E2 and P inblood serum of Fmr1 knockout mouse and FVB mouseJ. Chi-nese Journal of Comparative Medicine, 2006, 16(8): 459-462.Chinese12 CHAMBERS AP, WO

20、ODS SC. The role of neuropeptide Y inenergy homeostasisJ. Handb Exp Pharmacol, 2020(209): 23-45.13 KLENKE U, CONSTANTIN S, WRAY S, et al. Neuropeptide Ydirectly inhibits neuronal activity in a subpopulation of go-nadotropin-releasing hormone-1 neurons via Y1 receptors J.Endocrinology, 2018, 151(6):

21、2736-2746.14 KEATOR CS, CUSTER EE, HOAGLAND TA, et al. Evidencefor a potential role of neuropeptide Y in ovine corpus luteumfunctionJ. Domest Anim Endocrinol, 2018, 38(2): 103-114.15 ROA J, HERBISON AE. Direct regulation of GnRH neuron ex-citability by arcuate nucleus POMC and NPY neuron neuropep-ti

22、des in female miceJ. Endocrinology, 2020, 153(11): 5587-5599.16 NAKAYAMA Y, HATTORI N, OTANI H, et al. Gam-ma-aminobutyric acid (GABA)-C receptor stimulation increasesprolactin(PRL) secretion in cultured rat anterior pituitary cellsJ.Biochem Pharmacol, 2006, 71(12): 1705-1710.17 HEMOND PJ, O BOYLE MP, ROBERTS CB, et al. SimulatedGABA synaptic input and L-type calcium channels form func-tional microdomains in hypothalamic gonadotropin-releasing hor-mone neuronsJ. J Neurosci, 2020, 32(26): 8756-8766.

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