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1、动物生理学实验第1页，共63页，编辑于2022年，星期五实验一实验一动物生理学实验常用仪器动物生理学实验常用仪器实验基本操作技术实验基本操作技术第2页，共63页，编辑于2022年，星期五1动物生理学实验的地位动物生理学实验的地位共共27学时，属专业基础课学时，属专业基础课成绩：报告成绩：报告60%，考试，考试30%，考勤，考勤10%2动物生理学实验的要求动物生理学实验的要求实验前、实验中、实验前、实验中、实验后实验后第3页，共63页，编辑于2022年，星期五3常用生理仪器的使用常用生理仪器的使用（1）刺激系统）刺激系统刺激器、刺激电极刺激器、刺激电极（2）引导、换能系统）引导、换能系统张力换能
2、器、压力换能器张力换能器、压力换能器（3）放大系统）放大系统（4）显示、记录系统）显示、记录系统第4页，共63页，编辑于2022年，星期五4常用手术器械常用手术器械（1）刀：姿势有指压式、执笔式及反挑式等。）刀：姿势有指压式、执笔式及反挑式等。（2）剪：外科剪、眼科剪、毛剪、普通剪等。）剪：外科剪、眼科剪、毛剪、普通剪等。（3）镊：眼科镊、外科镊。）镊：眼科镊、外科镊。（4）钳：止血钳、持针钳、创巾钳。）钳：止血钳、持针钳、创巾钳。（5）其他：探针、玻璃分针、蛙板、锌铜弓、）其他：探针、玻璃分针、蛙板、锌铜弓、蛙心夹、动脉导管、气管插管、肌槽等。蛙心夹、动脉导管、气管插管、肌槽等。第5页，共6
3、3页，编辑于2022年，星期五5动物的麻醉动物的麻醉（1）麻醉前准备：）麻醉前准备：P21药物选择：根据实验内容合理选用麻醉药。药物选择：根据实验内容合理选用麻醉药。33%乙醇生理溶液：乙醇生理溶液：57mL/kg，耳缘静脉注射。，耳缘静脉注射。速眠新：速眠新：0.10.2mL/kg，皮下或肌肉注射。，皮下或肌肉注射。麻醉前核对药名，检查药品有无变质。麻醉前核对药名，检查药品有无变质。呕吐中枢发达的动物（狗、猫等）在手术前应禁食呕吐中枢发达的动物（狗、猫等）在手术前应禁食12h，以减轻呕吐反应。以减轻呕吐反应。需在全麻下进行手术的动物，可适当给予麻醉辅需在全麻下进行手术的动物，可适当给予麻醉辅
4、助药，如皮下注射吗啡镇痛，注射阿托品减少呼吸道助药，如皮下注射吗啡镇痛，注射阿托品减少呼吸道分泌物产生等。分泌物产生等。第6页，共63页，编辑于2022年，星期五（2）麻醉效果观察）麻醉效果观察呼吸：呼吸加快且不规则，表示麻醉过浅；呼吸规呼吸：呼吸加快且不规则，表示麻醉过浅；呼吸规则且则且平稳，已达麻醉深度；呼吸变慢，且以腹式呼平稳，已达麻醉深度；呼吸变慢，且以腹式呼吸为主，吸为主，表示麻醉过深，动物有生命危险。表示麻醉过深，动物有生命危险。反射：角膜反射灵敏，麻醉过浅；角膜反射迟钝，反射：角膜反射灵敏，麻醉过浅；角膜反射迟钝，麻醉程度麻醉程度适宜；角膜反射消失，伴瞳孔散大，则适宜；角膜反射消
5、失，伴瞳孔散大，则麻醉过深。麻醉过深。肌张力：肌张力亢进，麻醉过浅；全身肌肉松弛，麻醉合适。肌张力：肌张力亢进，麻醉过浅；全身肌肉松弛，麻醉合适。皮肤夹捏：夹捏动物皮肤，观察皮肤的反应。皮肤夹捏：夹捏动物皮肤，观察皮肤的反应。第7页，共63页，编辑于2022年，星期五（3）麻醉注意事项）麻醉注意事项正确选用麻醉药品、用药剂量及给药途径。正确选用麻醉药品、用药剂量及给药途径。静脉麻醉时，先将总量的静脉麻醉时，先将总量的1/3快速注入，使动物迅速渡过快速注入，使动物迅速渡过兴奋期，余下兴奋期，余下2/3缓慢注射，并观察动物状态及反应，缓慢注射，并观察动物状态及反应，以准确判断麻醉深度。以准确判断麻
6、醉深度。需补充麻醉药时，一次补量不超过总量的需补充麻醉药时，一次补量不超过总量的1/5。麻醉中应随时保持呼吸道通畅，注意保温。麻醉中应随时保持呼吸道通畅，注意保温。手术操作复杂、创伤大、实验时间较长或麻醉深度不理想手术操作复杂、创伤大、实验时间较长或麻醉深度不理想等情况下，可配合局部浸润麻醉或基础麻醉。等情况下，可配合局部浸润麻醉或基础麻醉。实验中注意体液平衡，防止酸中毒及肺水肿的发生。实验中注意体液平衡，防止酸中毒及肺水肿的发生。第8页，共63页，编辑于2022年，星期五6常见手术方法（家兔）常见手术方法（家兔）（1）麻醉（静脉、皮下、肌肉）麻醉（静脉、皮下、肌肉）（2）保定）保定（3）除去
7、被毛、切口）除去被毛、切口（4）颈部神经、血管分离）颈部神经、血管分离（5）气管插管）气管插管（6）输尿管、膀胱分离）输尿管、膀胱分离第9页，共63页，编辑于2022年，星期五7器械打结器械打结（1）活结：用于家兔保定。）活结：用于家兔保定。（2）死结：用于血管、神经结扎。）死结：用于血管、神经结扎。要领：钳压线，线压钳。要领：钳压线，线压钳。第10页，共63页，编辑于2022年，星期五实验二实验二计算机生物信号采集处理系统计算机生物信号采集处理系统1系统组成与工作原理系统组成与工作原理由硬件和软件构成。硬件主要完成对各种生物电信由硬件和软件构成。硬件主要完成对各种生物电信号（如心电、肌电、脑
8、电）与非电信号（如血压、张号（如心电、肌电、脑电）与非电信号（如血压、张力）进行调理、放大，并对信号进行模力）进行调理、放大，并对信号进行模/数（数（A/D）转）转换，使之进入计算机。软件主要对已经数字化了的生换，使之进入计算机。软件主要对已经数字化了的生物信号进行显示、记录、存储、处理及打印输出，同物信号进行显示、记录、存储、处理及打印输出，同时对系统各部分进行控制，与操作者进行人机对话。时对系统各部分进行控制，与操作者进行人机对话。第11页，共63页，编辑于2022年，星期五2主界面主界面从上到下依次分为：标题栏、菜单栏、工具栏、状态从上到下依次分为：标题栏、菜单栏、工具栏、状态提示栏及采
9、样窗、控制面板和数据窗等其他多个相应的提示栏及采样窗、控制面板和数据窗等其他多个相应的子窗口组成。子窗口组成。第12页，共63页，编辑于2022年，星期五3使用方法使用方法3.1设置：标准配置，恢复出厂时的配置。设置：标准配置，恢复出厂时的配置。3.2新建：选择实验项目，填写实验信息，进入实验新建：选择实验项目，填写实验信息，进入实验窗口，开始实验。窗口，开始实验。3.3采样：记录实验数据采样：记录实验数据3.4控制面板参数调节：控制面板参数调节：通道功能调节、刺激参数调节通道功能调节、刺激参数调节3.5存储：存储：文件保存位置：文件保存位置：F：/文件名：文件名：12动医动医3-呼吸（左呼吸
10、（左2）3.6编辑：编辑：打开原文件打开原文件选择选择复制复制“工具工具”下的下的“画图画图”处理文处理文件件复制图片复制图片存盘到存盘到F：/。第13页，共63页，编辑于2022年，星期五实验三实验三影响血液凝固的因素影响血液凝固的因素红细胞脆性的测定红细胞脆性的测定血红蛋白的测定血红蛋白的测定第14页，共63页，编辑于2022年，星期五影响血液凝固的因素影响血液凝固的因素 1 1 实验目的实验目的 以凝血时间为指标，了解影响凝血的因素，加深以凝血时间为指标，了解影响凝血的因素，加深 对生理止血过程的理解。对生理止血过程的理解。2 2 实验原理实验原理 血液凝固是一个酶解激活过程，有多种凝血
11、因子血液凝固是一个酶解激活过程，有多种凝血因子 参与。根据凝血过程起动时凝血因子来源不同，可将参与。根据凝血过程起动时凝血因子来源不同，可将 凝血分为内源性激活途径和外源性激活途径。凝血分为内源性激活途径和外源性激活途径。第15页，共63页，编辑于2022年，星期五3 3 实验对象：实验对象：家兔家兔4 4 方法与步骤方法与步骤4.1 4.1 家兔的麻醉、保定与手术家兔的麻醉、保定与手术 33%33%乙醇溶液，乙醇溶液，6mL/kg6mL/kg，耳缘静脉注射。，耳缘静脉注射。4.2 4.2 颈动脉采血颈动脉采血4.3 4.3 试管准备试管准备4.4 4.4 记录凝血时间记录凝血时间第16页，共
12、63页，编辑于2022年，星期五5 5 实验结果实验结果表表1 1 血液凝固及其影响因素血液凝固及其影响因素试试管号管号实验处实验处理理凝血凝血时间时间（秒）（秒）1 1空白空白2 2液体石蜡液体石蜡4 4滴滴3 3棉花少棉花少许许4 4冰水冰水环环境境5 5肝素肝素4 4滴滴6 6草酸草酸钾钾4 4滴滴7 7肺肺组织组织浸液浸液4 4滴滴5 5号管加号管加CaClCaCl2 24 4滴滴6 6号管加号管加CaClCaCl2 24 4滴滴第17页，共63页，编辑于2022年，星期五6 6 注意事项注意事项6.1 6.1 采血过程要尽量快，以减少计时误差，对采血过程要尽量快，以减少计时误差，对
13、比实验的采血时间要紧接着进行。比实验的采血时间要紧接着进行。6.2 6.2 每支试管口径大小及采血量要相对一致，每支试管口径大小及采血量要相对一致，不可相差太大。不可相差太大。6.3 6.3 判断凝血的标准要一致，一般以倾斜试管判断凝血的标准要一致，一般以倾斜试管 达达4545时试管内血液不见流动为准。时试管内血液不见流动为准。第18页，共63页，编辑于2022年，星期五红细胞脆性的测定红细胞脆性的测定1 1 实验目的实验目的 学习测定红细胞渗透脆性的方法，理解细胞外液学习测定红细胞渗透脆性的方法，理解细胞外液 渗透张力对维持细胞正常形态与功能的重要性。渗透张力对维持细胞正常形态与功能的重要性
14、。2 2 实验原理实验原理 正常红细胞悬浮于等渗的血浆中，著置于高渗溶正常红细胞悬浮于等渗的血浆中，著置于高渗溶 液内，则红细胞会因失水而皱缩；反之，置于低渗溶液内，则红细胞会因失水而皱缩；反之，置于低渗溶 液内，则水进入红细胞，使红细胞膨胀。如环境渗透液内，则水进入红细胞，使红细胞膨胀。如环境渗透 压继续下降，红细胞会因继续膨胀而破裂，释放血红压继续下降，红细胞会因继续膨胀而破裂，释放血红 蛋白，称之为溶血。红细胞膜对低渗溶液有一定的抵蛋白，称之为溶血。红细胞膜对低渗溶液有一定的抵 抗力，这一特征称为红细胞的渗透脆性。抗力，这一特征称为红细胞的渗透脆性。第19页，共63页，编辑于2022年，
15、星期五3 3 实验对象：实验对象：动物种类不限动物种类不限4 4 方法与步骤方法与步骤4.1 4.1 溶液配置溶液配置表表2 2 不同浓度不同浓度NaClNaCl溶液配制溶液配制管管 号号1 12 23 34 45 56 67 78 89 910101%NaCl1%NaCl（mLmL）9.09.06.56.56.06.05.55.55.05.04.54.54.04.03.53.53.03.02.52.5蒸蒸馏馏水水(mL)(mL)1.01.03.53.54.04.04.54.55.05.05.55.56.06.06.56.57.07.07.57.5NaClNaCl浓浓度度（%）0.900.90
16、0.650.650.600.600.550.550.500.500.450.450.400.400.350.350.300.300.250.25第20页，共63页，编辑于2022年，星期五4.2 4.2 制备抗凝血：柠檬酸钠作抗凝剂。制备抗凝血：柠檬酸钠作抗凝剂。4.3 4.3 加抗凝血：每只试管加加抗凝血：每只试管加1 1滴。滴。4.4 4.4 观察结果观察结果未溶血试管：液体下层有大量红细胞下沉，上层为无色透未溶血试管：液体下层有大量红细胞下沉，上层为无色透明，表明无红细胞破裂。明，表明无红细胞破裂。不完全溶血试管：液体下层有红细胞下沉，上层出现透明淡不完全溶血试管：液体下层有红细胞下沉，
17、上层出现透明淡红色，表明部分红细胞已经破裂，称为不完全溶血。红色，表明部分红细胞已经破裂，称为不完全溶血。完全溶血试管：液体完全变成透明红色，管底无红细胞下沉。完全溶血试管：液体完全变成透明红色，管底无红细胞下沉。第21页，共63页，编辑于2022年，星期五5 5 实验结果实验结果表表2 2 家兔家兔HbHb含量及含量及RBCRBC脆性测定脆性测定分分组组HbHb测测定定（g/Lg/L）RBC RBC脆性脆性测测定（定（NaCl%NaCl%）最小抵抗力最小抵抗力最大抵抗力最大抵抗力实验组实验组对对照照组组80801501500.600.600.550.550.400.400.350.35第22
18、页，共63页，编辑于2022年，星期五6 6 注意事项注意事项6.1 6.1 试管要干净；试管要干净；6.2 6.2 配液要准确；配液要准确；6.3 6.3 加血量要一致；加血量要一致；6.4 6.4 轻轻混匀，减少溶血机会；轻轻混匀，减少溶血机会；6.5 6.5 静置时间不少于静置时间不少于30 min30 min。第23页，共63页，编辑于2022年，星期五血红蛋白的测定血红蛋白的测定1 1 实验目的实验目的 掌握比色法测定动物血红蛋白含量的方法。掌握比色法测定动物血红蛋白含量的方法。2 2 实验原理实验原理 血红蛋白的颜色与氧结合量有关，当用一定的氧血红蛋白的颜色与氧结合量有关，当用一定
19、的氧 化剂将其氧化时，可使其转变为稳定、棕色的高铁血化剂将其氧化时，可使其转变为稳定、棕色的高铁血 红蛋白，而且颜色与血红蛋白的浓度成正比。因此，红蛋白，而且颜色与血红蛋白的浓度成正比。因此，可与标准色板进行对比，求出血红蛋白的浓度，即每可与标准色板进行对比，求出血红蛋白的浓度，即每 升血液中含血红蛋白的克数（升血液中含血红蛋白的克数（g.Lg.L-1-1）。）。第24页，共63页，编辑于2022年，星期五3 3 实验对象：实验对象：动物种类不限动物种类不限4 4 方法与步骤：方法与步骤：使用沙里氏血红蛋白计测定。使用沙里氏血红蛋白计测定。比色法是用比色法是用HClHCl使血红蛋白酸化形成粽色
20、的高铁使血红蛋白酸化形成粽色的高铁 血红蛋白，然后和标准比色板进行比色。血红蛋白，然后和标准比色板进行比色。（1 1）血红蛋白计由标准比色箱和测定管组成。测定管）血红蛋白计由标准比色箱和测定管组成。测定管 两侧有刻度，一侧为血红蛋白量的绝对值，以每两侧有刻度，一侧为血红蛋白量的绝对值，以每100 100 mL mL血液中所含血红蛋白的克数表示；另一侧为相对血液中所含血红蛋白的克数表示；另一侧为相对 值，以（即相当于正常平均值的百分数）来表示。值，以（即相当于正常平均值的百分数）来表示。第25页，共63页，编辑于2022年，星期五（2 2）测定方法）测定方法血红蛋白吸管清洁：自来水血红蛋白吸管清
21、洁：自来水蒸馏水蒸馏水无水乙醇。无水乙醇。将将0.1N0.1N盐酸加入测定管中至刻度盐酸加入测定管中至刻度“2”2”处。处。用血红蛋白吸管吸取用血红蛋白吸管吸取20L20L血液，将血液吹入盐酸中，血液，将血液吹入盐酸中，并利用上层盐酸将吸管反复洗涤多次（避免起泡）。并利用上层盐酸将吸管反复洗涤多次（避免起泡）。酸化酸化10 min10 min后，逐滴加入蒸馏水，边加边混匀并与标准后，逐滴加入蒸馏水，边加边混匀并与标准比色板比较，至二者颜色相同为止。比色板比较，至二者颜色相同为止。读数即为每读数即为每100 mL100 mL血液中血红蛋白的克数。血液中血红蛋白的克数。第26页，共63页，编辑于2
22、022年，星期五【注意事项注意事项】（1 1）血红蛋白吸管和比色管要清洁；）血红蛋白吸管和比色管要清洁；（2 2）吸取血液要准确，避免起泡；）吸取血液要准确，避免起泡；（3 3）酸化时间不能少于）酸化时间不能少于10 min10 min；（4 4）滴加蒸馏水要准确；）滴加蒸馏水要准确；（5 5）在自然光下比色。）在自然光下比色。第27页，共63页，编辑于2022年，星期五实验报告的撰写实验报告的撰写1 1 实验原理实验原理2 2 材料与方法材料与方法2.1 2.1 主要器材主要器材2.2 2.2 主要药品主要药品2.3 2.3 实验动物实验动物2.4 2.4 实验方法实验方法2.4.1 Hb2
23、.4.1 Hb测定：按动物生理学实验测定：按动物生理学实验8989页方法进行页方法进行11。2.4.2 RBC2.4.2 RBC脆性测定：按动物生理学实验脆性测定：按动物生理学实验8787页方法进页方法进 行行11。2.4.3 2.4.3 影响血液凝固因素：按动物生理学实验影响血液凝固因素：按动物生理学实验9999页方页方 法进行法进行11。第28页，共63页，编辑于2022年，星期五3 3 实验结果实验结果3.1 3.1 家兔家兔HbHb含量及含量及RBCRBC脆性测定：见表脆性测定：见表1 1。表表1 1 家兔家兔HbHb含量及含量及RBCRBC脆性测定脆性测定分分组组HbHb测测定定含量
24、（含量（g/Lg/L）RBCRBC脆性脆性测测定（定（NaCl%NaCl%）最小抵抗最小抵抗最大抵抗最大抵抗实验组实验组对对照照组组80801501500.600.600.550.550.400.400.350.35第29页，共63页，编辑于2022年，星期五3.2 3.2 不同因素对血液凝固时间的影响不同因素对血液凝固时间的影响表表2 2 血液凝固及其影响因素血液凝固及其影响因素试试管号管号实验处实验处理理凝血凝血时间时间（秒）（秒）1 1空白空白2 2液体石蜡液体石蜡4 4滴滴3 3棉花少棉花少许许4 4冰水冰水环环境境5 5肝素肝素4 4滴滴6 6草酸草酸钾钾4 4滴滴7 7脑组织脑组织
25、浸液浸液4 4滴滴5 5号管加号管加CaClCaCl2 24 4滴滴6 6号管加号管加CaClCaCl2 24 4滴滴第30页，共63页，编辑于2022年，星期五4 4 分析与探讨分析与探讨4.1 4.1 本次实验家兔本次实验家兔HbHb测定结果比对照高（或低、或基本一测定结果比对照高（或低、或基本一 致），从操作过程方面说明原因：致），从操作过程方面说明原因：。4.2 4.2 本次实验家兔本次实验家兔RBCRBC脆性测定结果，最小抵抗比对照组高（或脆性测定结果，最小抵抗比对照组高（或 低、或基本一致），最大抵抗低、或基本一致），最大抵抗，从操作过程方面说明，从操作过程方面说明 原因：原因：。
26、4.3 4.3 家兔凝血时间测定结果表明，家兔凝血时间测定结果表明，处理能加快（抑制或不处理能加快（抑制或不 凝）血液凝固，为什么？凝）血液凝固，为什么？管加管加CaClCaCl2 2后凝固，为什么？后凝固，为什么？（从凝血机制分析）（从凝血机制分析）5 5 参考文献参考文献1 1 伍莉，黄庆洲伍莉，黄庆洲.动物生理学实验动物生理学实验M.M.重庆：西南师范大学出版社，重庆：西南师范大学出版社，20132013，87-100.87-100.2 2 邹永新，郭予强邹永新，郭予强.我国鸭病毒性疾病的发生和流行概况我国鸭病毒性疾病的发生和流行概况J.J.中国兽医杂中国兽医杂 志，志，20022002
27、（6 6）：）：38-40.38-40.第31页，共63页，编辑于2022年，星期五家兔家兔HbHb、RBCRBC脆性测定及影响血凝的因素观察脆性测定及影响血凝的因素观察1 1 实验相关信息及目的实验相关信息及目的2 2 材料材料2.1 2.1 动物动物2.2 2.2 主要药品：主要药品：2.3 2.3 主要仪器：主要仪器：3 3 实验方法：简述或按实验方法：简述或按动物生理学实验动物生理学实验方法进行方法进行11。4 4 结果结果4.1 4.1 家兔家兔HbHb、RBCRBC脆性测定：见表脆性测定：见表1 1。4.2 4.2 家兔血凝时间的测定：见表家兔血凝时间的测定：见表2 2。表表1 1
28、 家兔家兔HbHb含量及含量及RBCRBC脆性测定脆性测定 表表2 2 不同因素对家兔血凝时间的影响不同因素对家兔血凝时间的影响5 5 讨论讨论5.1 5.1 家兔家兔HbHb测定结果与对照比较，其值偏高，原因：测定结果与对照比较，其值偏高，原因：5.2 5.2 家兔家兔RBCRBC脆性测定结果与对照比较，其值，原因：脆性测定结果与对照比较，其值，原因：5.3 家兔血凝时间测定结果表明，时间长短，原因：家兔血凝时间测定结果表明，时间长短，原因：参考文献参考文献1 1 陈陈 杰杰.家畜生理学家畜生理学MM，第四版，第四版.北京：中国家业出版社北京：中国家业出版社.2004.2004，23-34.
29、23-34.分分组组实验组实验组对对照照组组Hb（g/L）RBC脆性（脆性（NaCL%）最小抵抗最小抵抗最大抵抗最大抵抗80-1500.60.550.40.35血凝血凝时间时间（S）实验实验管号管号处处理因素理因素草草+Ca+肝素肝素+Ca+对对照照棉花棉花肝素肝素冰水冰水石蜡石蜡草草脑组织脑组织第32页，共63页，编辑于2022年，星期五实验四实验四 心肌收缩的特点心肌收缩的特点【实验目的实验目的】学习蟾蜍心脏活动描记的方法，观察心肌收缩的特点。学习蟾蜍心脏活动描记的方法，观察心肌收缩的特点。【实验原理实验原理】心肌的有效不应期特别长，几乎占据了整个收缩心肌的有效不应期特别长，几乎占据了整个
30、收缩 期和舒张早期，在此期内任何刺激均不能引起心肌收期和舒张早期，在此期内任何刺激均不能引起心肌收 缩。在心脏舒张早期之后，给心肌一次有效刺激，缩。在心脏舒张早期之后，给心肌一次有效刺激，会引起心脏一次期前收缩，紧接着出现一次较长的间会引起心脏一次期前收缩，紧接着出现一次较长的间 歇歇代偿间歇。代偿间歇。第33页，共63页，编辑于2022年，星期五【实验对象实验对象】蛙或蟾蜍蛙或蟾蜍【实验药品实验药品】任氏液任氏液【实验方法与步骤实验方法与步骤】1.1.实验准备实验准备（1 1）在体蛙心制备：取蛙一只，破坏脑、脊髓，仰卧固定）在体蛙心制备：取蛙一只，破坏脑、脊髓，仰卧固定于蛙板上。左手持镊子提
31、起胸骨后端的皮肤剪一小口，于蛙板上。左手持镊子提起胸骨后端的皮肤剪一小口，然后向左、右两侧锁骨外侧剪开皮肤、肌肉，剪断左右然后向左、右两侧锁骨外侧剪开皮肤、肌肉，剪断左右锁骨，使创口呈一倒三角形，充分暴露心脏部位，并用锁骨，使创口呈一倒三角形，充分暴露心脏部位，并用眼科剪剪开心包膜，彻底暴露心脏。眼科剪剪开心包膜，彻底暴露心脏。第34页，共63页，编辑于2022年，星期五（2 2）观察心脏的结构）观察心脏的结构 识别蛙心脏。自心脏腹面可观察到心室、识别蛙心脏。自心脏腹面可观察到心室、心房、动脉球和主动脉。用玻璃分针向前翻转心房、动脉球和主动脉。用玻璃分针向前翻转 蛙心，暴露心脏背面可观察到静脉
32、窦和心房。蛙心，暴露心脏背面可观察到静脉窦和心房。（3 3）连接实验装置）连接实验装置 将蛙心夹上的细线与张力换能器相连，让将蛙心夹上的细线与张力换能器相连，让 心脏搏动信号传入计算机生物信号采集处理系心脏搏动信号传入计算机生物信号采集处理系 统。将铜丝与心室接触良好并固定稳妥后，与统。将铜丝与心室接触良好并固定稳妥后，与 刺激器的输出连接。刺激器的输出连接。第35页，共63页，编辑于2022年，星期五2.2.实验项目实验项目（1 1）描记正常曲线，观察曲线的收缩相和舒张相。）描记正常曲线，观察曲线的收缩相和舒张相。（2 2）用中等强度的单个阈上刺激在收缩期刺激心室，）用中等强度的单个阈上刺激
33、在收缩期刺激心室，有何变化？为什么？有何变化？为什么？（3 3）用中等强度的单个阈上刺激在舒张中后期刺激心）用中等强度的单个阈上刺激在舒张中后期刺激心 室，有何变化？为什么？室，有何变化？为什么？（4 4）心肌）心肌“全或无全或无”反应：用丝线在静脉窦与心房之反应：用丝线在静脉窦与心房之 间作一结扎，心脏停止跳动。然后给予阈下及不间作一结扎，心脏停止跳动。然后给予阈下及不 同强度的阈上刺激，观察蛙心收缩强度的变化。同强度的阈上刺激，观察蛙心收缩强度的变化。第36页，共63页，编辑于2022年，星期五【结果及分析结果及分析】1.1.心缩期单个阈上刺激，心脏有何变化，为什么？心缩期单个阈上刺激，心
34、脏有何变化，为什么？2.2.心舒期单个阈上刺激，心脏有何变化，为什么？心舒期单个阈上刺激，心脏有何变化，为什么？3.3.第一结扎后，心房、心室活动有何变化，为什么？第一结扎后，心房、心室活动有何变化，为什么？4.4.阈下刺激心脏的收缩曲线幅度有何变化，为什么？阈下刺激心脏的收缩曲线幅度有何变化，为什么？5.5.不同强度阈上刺激，曲线幅度有何变化，为什么？不同强度阈上刺激，曲线幅度有何变化，为什么？第37页，共63页，编辑于2022年，星期五【注意事项注意事项】1.1.破坏蛙的大脑和脊髓要彻底。破坏蛙的大脑和脊髓要彻底。2.2.经常给心脏滴加任氏液，以保持心脏适宜的经常给心脏滴加任氏液，以保持心
35、脏适宜的环境。环境。3.3.张力传感器与蛙心夹之间的丝线应保持适宜张力传感器与蛙心夹之间的丝线应保持适宜的紧张度。的紧张度。4.4.铜丝与心室接触良好的同时，还应尽量不让铜丝与心室接触良好的同时，还应尽量不让其阻碍心脏的自发收缩。其阻碍心脏的自发收缩。第38页，共63页，编辑于2022年，星期五实验四实验四 蟾蜍心肌收缩的特点蟾蜍心肌收缩的特点1 1 实验相关信息及目的实验相关信息及目的2 2 实验原理实验原理3 3 材料材料3.1 3.1 动物动物3.2 3.2 主要药品：任氏液主要药品：任氏液3.3 3.3 主要仪器：计算机生物信号采集系统、张力换能器主要仪器：计算机生物信号采集系统、张力
36、换能器4 4 方法：简述或按生理实验指导书方法：简述或按生理实验指导书a ab b页介绍方法进行页介绍方法进行 5 5 结果：见图。结果：见图。正常心肌正常心肌舒缩曲线舒缩曲线心缩期心缩期单刺激单刺激心舒期心舒期单刺激单刺激代偿代偿间歇间歇期前收缩期前收缩第一结扎第一结扎窦房沟窦房沟阈刺激阈刺激阈上刺激阈上刺激阈上刺激阈上刺激图：不同时期刺激心肌其收缩活动的变化图：不同时期刺激心肌其收缩活动的变化 6 6 讨论讨论 6.1 6.1 心缩期单个阈上刺激，心活动变化？其原因？心缩期单个阈上刺激，心活动变化？其原因？6.2 6.2 心舒中后期单个阈上刺激，心活动变化？其原因？心舒中后期单个阈上刺激，
37、心活动变化？其原因？6.3 6.3 窦房沟结扎后，心活动变化？其原因？窦房沟结扎后，心活动变化？其原因？6.4 6.4 结扎后单个不同强度阈上刺激，心肌收缩强度的变化趋势？其原因？结扎后单个不同强度阈上刺激，心肌收缩强度的变化趋势？其原因？参考文献参考文献第39页，共63页，编辑于2022年，星期五实验五实验五 蛙坐骨神经腓肠肌标本的制备蛙坐骨神经腓肠肌标本的制备骨骼肌的生理特性骨骼肌的生理特性1 1 原理：用蛙的坐骨神经原理：用蛙的坐骨神经-腓肠肌标本研究刺激与反应腓肠肌标本研究刺激与反应 的关系和肌肉收缩的特性。的关系和肌肉收缩的特性。2 2 材料：蟾蜍。材料：蟾蜍。3 3 方法：参照方法
38、：参照动物生理学实验动物生理学实验和实验录像进行。和实验录像进行。第40页，共63页，编辑于2022年，星期五第41页，共63页，编辑于2022年，星期五第42页，共63页，编辑于2022年，星期五4 4 结果结果第43页，共63页，编辑于2022年，星期五实验六实验六 心血管活动的神经心血管活动的神经-体液调节体液调节 目的目的 学习动脉血压的直接测定方法，并观察神经学习动脉血压的直接测定方法，并观察神经-体液因素体液因素 对心血管活动的调节。对心血管活动的调节。原理原理 正常情况下，动脉血压通过神经和体液因素的调节而保正常情况下，动脉血压通过神经和体液因素的调节而保 持相对稳定，其中以降压
39、反射尤为重要。若阻断颈动脉血流，持相对稳定，其中以降压反射尤为重要。若阻断颈动脉血流，颈动脉窦压力感受器受到的刺激减少，通过窦神经传向心血管颈动脉窦压力感受器受到的刺激减少，通过窦神经传向心血管 中枢的刺激亦减少，降压反射活动减弱，血压升高；当压迫颈中枢的刺激亦减少，降压反射活动减弱，血压升高；当压迫颈 动脉窦时，通过窦神经传向心血管中枢的刺激增加，降压反射动脉窦时，通过窦神经传向心血管中枢的刺激增加，降压反射 活动增强，血压降低。活动增强，血压降低。肾上腺素使心率加快，心缩力加强，心输出量增加，血压肾上腺素使心率加快，心缩力加强，心输出量增加，血压 升高；乙酰胆碱引起心缩力减弱，心率减慢，血
40、管扩张，外周升高；乙酰胆碱引起心缩力减弱，心率减慢，血管扩张，外周 阻力降低，血压下降。阻力降低，血压下降。第44页，共63页，编辑于2022年，星期五 对象对象 家兔。家兔。药品药品 846 846，肝素（，肝素（300 U/mL300 U/mL），），0.01%AD0.01%AD，0.01%Ach0.01%Ach。器械器械 生物信号采集处理系统，血压换能器，手术器械等。生物信号采集处理系统，血压换能器，手术器械等。步骤步骤 1.1.实验准备：实验准备：（1 1）肌肉麻醉）肌肉麻醉 （2 2）分离颈部神经、血管）分离颈部神经、血管 （3 3）动脉插管）动脉插管2.2.连接实验装置：连接实验装
41、置：3.3.实验项目：见图示。实验项目：见图示。第45页，共63页，编辑于2022年，星期五 注意事项注意事项 1.1.麻醉应适量，以免过量引起动物死亡；麻醉应适量，以免过量引起动物死亡；2.2.分离血管、神经原则：先认准再分离；先神经再血管；分离血管、神经原则：先认准再分离；先神经再血管；先细后粗；先细后粗；3.3.动脉插管的固定要可靠，防止漏液和血管堵塞；动脉插管的固定要可靠，防止漏液和血管堵塞；4.4.要待前一项目恢复正常后才能进行下一项目；要待前一项目恢复正常后才能进行下一项目；5.5.实验结束后，结扎动脉近心端后再拔除动脉插管。实验结束后，结扎动脉近心端后再拔除动脉插管。第46页，共
42、63页，编辑于2022年，星期五实验七实验七 离体小肠平滑肌的生理特性离体小肠平滑肌的生理特性1 1 原理：平滑肌具有特定的生理特性，对化学、温度和原理：平滑肌具有特定的生理特性，对化学、温度和 牵拉刺激非常敏感。牵拉刺激非常敏感。2 2 材料：家兔、采集系统、张力换能器、材料：家兔、采集系统、张力换能器、AchAch、d d。3 3 方法：参照方法：参照动物生理学实验动物生理学实验和实验录像进行和实验录像进行。4 4 项目：项目：AchAch、d d、降温、升温。、降温、升温。第47页，共63页，编辑于2022年，星期五5 5 注意事项注意事项5.1 5.1 实验动物要禁食实验动物要禁食24
43、h24h；5.2 5.2 实验前标本要放在实验前标本要放在3838台氏液中浸泡数分台氏液中浸泡数分 钟，使标本兴奋性稳定再进行实验；钟，使标本兴奋性稳定再进行实验；5.3 5.3 实验中注意控制温度；实验中注意控制温度；5.4 5.4 实验中随时更换新鲜台氏液；实验中随时更换新鲜台氏液；5.5 5.5 实验中添加的药物量要由少至多。实验中添加的药物量要由少至多。第48页，共63页，编辑于2022年，星期五实验八实验八 呼吸运动的调节呼吸运动的调节1 1 原理：呼吸运动受内、外环境刺激的影响。原理：呼吸运动受内、外环境刺激的影响。2 2 材料：家兔、采集系统、压力换能器、材料：家兔、采集系统、压
44、力换能器、2%2%乳酸、乳酸、COCO2 2、33%33%乙醇溶液。乙醇溶液。3 3 方法：参照方法：参照动物生理学实验动物生理学实验方法方法进行进行。4 4 项目：吸入项目：吸入COCO2 2、增大无效腔、夹闭气管、静注乳酸、切断、增大无效腔、夹闭气管、静注乳酸、切断 迷走神经。迷走神经。第49页，共63页，编辑于2022年，星期五5 5 注意事项注意事项5.1 5.1 气管插管内壁要干净；气管插管内壁要干净；5.2 5.2 气流适宜，以免直接影响呼吸运动，干扰气流适宜，以免直接影响呼吸运动，干扰 实验结果；实验结果；5.3 5.3 注射乳酸时要避免外漏以引起动物躁动；注射乳酸时要避免外漏以
45、引起动物躁动；5.4 5.4 每项实验前均应有正常呼吸曲线作比较；每项实验前均应有正常呼吸曲线作比较；5.5 5.5 吸入吸入COCO2 2时，出现现象应立即移开时，出现现象应立即移开COCO2 2，防，防 止动物死亡。止动物死亡。第50页，共63页，编辑于2022年，星期五实验九实验九 影响尿生成的因素影响尿生成的因素1 1 原理：观察不同生理因素对动物尿液量的影响。原理：观察不同生理因素对动物尿液量的影响。2 2 材料：家兔、垂体后叶素、材料：家兔、垂体后叶素、0.9%NaCl0.9%NaCl、20%G.S20%G.S、d d、AchAch、33%33%乙醇溶液。乙醇溶液。3 3 方法：参
46、照方法：参照动物生理学实验动物生理学实验和实验录像进行。和实验录像进行。4 4 结果：记录结果：记录3 min3 min尿量。尿量。4.1 4.1 正常尿量记录（正常尿量记录（3 min3 min）；）；4.2 4.2 静脉注射静脉注射0.9%NaCl 20 mL0.9%NaCl 20 mL（3737）；）；4.3 4.3 静脉注射静脉注射0.01%Ad 0.30.01%Ad 0.30.5 mL0.5 mL；4.4 4.4 静脉注射静脉注射20%G.S 10 mL20%G.S 10 mL（3737）；）；4.5 4.5 静脉注射垂体后叶素静脉注射垂体后叶素0.3 mL0.3 mL；第51页，共
47、63页，编辑于2022年，星期五5.1 5.1 实验前家兔多喂菜叶或水，以增加基础尿量；实验前家兔多喂菜叶或水，以增加基础尿量；5.2 5.2 保护好耳静脉，应从耳静脉远心端开始注射，保护好耳静脉，应从耳静脉远心端开始注射，逐渐向耳根部推进；逐渐向耳根部推进；5.3 5.3 暴露膀胱时，手术切口暴露膀胱时，手术切口3 34cm4cm为度，防止肠管为度，防止肠管 漏出；漏出；5.4 5.4 输尿管插管时一定要准确，且事先在插管内充输尿管插管时一定要准确，且事先在插管内充 满水；满水；5.5 5.5 每一项目要待前一项的影响基本结束后再进行。每一项目要待前一项的影响基本结束后再进行。第52页，共6
48、3页，编辑于2022年，星期五实验十实验十 脊髓反射的基本特征与反射弧分析脊髓反射的基本特征与反射弧分析1 1 实验目的实验目的 2 2 实验原理实验原理3 3 实验对象实验对象4 4 器材药品器材药品5 5 标本制备标本制备6 6 实验项目实验项目第53页，共63页，编辑于2022年，星期五6.1 6.1 脊髓反射脊髓反射（1 1）屈肌和对侧伸肌反射：）屈肌和对侧伸肌反射：0.5%H0.5%H2 2SOSO4 4刺激蛙脚趾。刺激蛙脚趾。（2 2）骚扒反射：）骚扒反射：0.5%H0.5%H2 2SOSO4 4滤纸片刺激蛙腹侧部。滤纸片刺激蛙腹侧部。（3 3）反射时测定：分别用）反射时测定：分别
49、用0.5%H0.5%H2 2SOSO4 4和和1%H1%H2 2SOSO4 4刺激蛙脚趾（三次，求平均刺激蛙脚趾（三次，求平均 值），比较反射时与刺激强度的关系。值），比较反射时与刺激强度的关系。（4 4）中枢兴奋的扩散：用不同力量夹蛙脚趾，观察有何现象。）中枢兴奋的扩散：用不同力量夹蛙脚趾，观察有何现象。（5 5）中枢兴奋的后作用：上述刺激停止后观察有何现象。）中枢兴奋的后作用：上述刺激停止后观察有何现象。6.2 6.2 反射弧分析反射弧分析（1 1）正常反射活动观察：）正常反射活动观察：0.5%H0.5%H2 2SOSO4 4刺激蛙脚趾。刺激蛙脚趾。（2 2）破坏脚趾感受器：后肢踝关节处破
50、坏皮肤感受器，检验屈肌反射。）破坏脚趾感受器：后肢踝关节处破坏皮肤感受器，检验屈肌反射。（3 3）破坏神经纤维：分离对侧坐骨神经，用）破坏神经纤维：分离对侧坐骨神经，用2%2%普鲁卡因麻醉后，再用普鲁卡因麻醉后，再用 0.5%H0.5%H2 2SOSO4 4刺激脚趾，待屈肌反射消失后，刺激脚趾，待屈肌反射消失后，1%H1%H2 2SOSO4 4滤纸片刺激蛙腹侧滤纸片刺激蛙腹侧 部检验骚扒反射。部检验骚扒反射。（4 4）捣毁脊髓：检验各种反射活动。）捣毁脊髓：检验各种反射活动。第54页，共63页，编辑于2022年，星期五家兔呼吸运动的调节（不同方法）家兔呼吸运动的调节（不同方法）目的要求目的要求