《2022年单增李斯特菌PFGE快速分子分型实验室标准操作程序 .pdf》由会员分享，可在线阅读，更多相关《2022年单增李斯特菌PFGE快速分子分型实验室标准操作程序 .pdf（8页珍藏版）》请在taowenge.com淘文阁网|工程机械CAD图纸|机械工程制图|CAD装配图下载|SolidWorks_CaTia_CAD_UG_PROE_设计图分享下载上搜索。
1、1 单增李斯特菌PFGE 分型实验室标准操作程序生物安全警示：目前李斯特菌感染剂量尚不确定，取决于宿主的易感性。高风险感染群体为孕妇、婴儿、免疫力低下病人和老人。所以，接触李斯特菌的实验人员必须意识到潜在的风险并且注意相关的建议。Day 0 受试培养物单菌落划线于脑心浸液平板，于37培养 14-18 h。建议利用螺口管保存菌种一支， 并且用同一接种环划线平板。 确保需要时可以对同一培养物进行试验。Day 1 1. 开启水浴摇床（ 54-55） 、水浴箱（ 55-60）和分光光度计。2. 准备 TE buffer（10 mM Tris:1 mM EDTA ，pH 8.0） ，配方如下：10 ml
2、 1 M Tris，pH 8.0，2 mL 0.5 M EDTA，pH 8.0，稀释于 1000 mL 无菌超纯水（临床实验室试剂用水） 。注意： TE buffer 用于 SeaKem 琼脂糖胶栓制备、悬浮细胞和洗涤裂解的PFGE 胶栓。3. 准备溶菌酶（ sigma L7651）母液（ 20 mg/mL） ，配方如下：a.称量 100 mg 溶菌酶（器皿放置于冰上保持低温）b.加入 5 mL TE buffer ，涡旋混合。c.分装（ 250 L ）于 eppendorf 管中，冷冻备用。4. TE buffer (10 mM Tris:1 mM EDTA，pH 8.0)制备 1% Sea
3、Kem 金琼脂糖 +1% SDS，配方如下：a.20% SDS 储液置于55-60水浴箱预热；b.称取 0.25 g SeaKem 金琼脂糖，加入25 ml TE buffer ，温和混匀，微波加热至完全溶解；c.加入 2.5 ml 10% SDS ，混匀，置于55-60水浴箱中备用。5. 将培养物编号标记于Falcon2054管，吸取 2 mL TE buffer 于管中，用灭菌棉签或接种环刮去培养物，轻轻转动接种环（棉签）将培养物悬浮于TE buffer中，尽量避免产生气泡。注意：细胞悬浮液体积大小取决于细胞浊度测定仪的使用体积。6. 将细胞调至以下浓度：a.分光光度计法：OD610nm=
4、1.0 （0.8-1.0） ；名师资料总结 - - -精品资料欢迎下载 - - - - - - - - - - - - - - - - - - 名师精心整理 - - - - - - - 第 1 页，共 8 页 - - - - - - - - - 2 b.Dade Microscan 浊度仪： 0.40-0.45 （Falcon2054 管测定）0.58-0.63（ Folcon2057 管测定）c.bioMerieux Vitek 色度计 : 17-18% 透过率（ Falcon2054 管测定）注意： 6a、6b、6c 的细胞浓度值在CDC 试验中得到满意的实验结果，如果利用不同的仪器或者试
5、管，可以根据自己实验室优化细胞浓度已得到最优试验结果。胶块制备将培养物编号标记于PFGE胶栓进行胶块制备。注意 1：未用完琼脂糖可以保存于室温，重复利用12 次。中低档微波10-15s，混匀，直到琼脂糖完全溶解。注意 2：蛋白酶K 溶液（ 20 mg/mL ）可以商业购得，也可以利用无菌超纯水溶解蛋白酶K粉末制得。为了得到最好的实验结果，分装（300-500 L）储存于 -20备用。使用前先冻融并放置冰上保持低温状态。如果蛋白酶K 储液由粉末制得，丢弃剩余的蛋白酶K。1. 移取 400 L 细胞适当浓度的悬浮液至1.5 mL 离心管中。2. 加入 20 L 冻融的溶菌酶（ 20 mg/mL ）
6、储液，温和混合。将离心管置于55-60水浴箱中水浴 10-20 min。丢弃剩余的溶菌酶。3. 加入 20 L 蛋白酶 K（20 mg/mL） ，用移液枪温和混匀。4. 加入 400 L 溶解的 1% SeaKem 金琼脂糖于 400 L 细胞悬浮液中， 来回上下颠倒几次温和混匀。在55-60水浴箱中水浴使得金琼脂糖胶保持溶解状态。5. 迅速将琼脂糖胶注入胶栓中，避免产生气泡。每个样品制备两个胶栓胶块作为平行实验。 室温下放置 10-15 min （4下 5 min） 至金琼脂糖凝固。注意：利用一次性胶栓模块制备胶块，200 L细胞悬浮液， 10L 溶菌酶 （20 mg/mL ）10 L蛋白酶
7、 K（20 mg/mL ） ， 200 L金琼脂糖可以制备4 块胶块。注意：细胞悬浮液和胶块制备要在短时间内进行，防止细胞提前裂解。如果制备大批量的样品，推荐一次处理10 个样品。当第一批样品处于细胞裂解温育阶段，即可进行下一批样品制备，直到样品制备完毕，增加裂解时间对细胞裂解效果影响不大。细胞胶块内裂解注意：同一菌株的两个胶块（重复利用胶栓制备）或者3-4 块胶块（一次性胶栓制备）可以在同一50 mL 离心管中进行裂解。名师资料总结 - - -精品资料欢迎下载 - - - - - - - - - - - - - - - - - - 名师精心整理 - - - - - - - 第 2 页，共 8
8、 页 - - - - - - - - - 3 1. 将培养物编号标记于50 mL 螺口离心管中。2. 制备细胞裂解液（ 50 mM Tris:50 mM EDTA, pH 8.0+1% Sarcosyl ） ，配方如下：25 mL 1 M Tris, pH 8.0 50 mL 0.5 M EDTA, pH 8.0 50 mL 10% sarcosyl (N-laurolsarcosine, Sodium salt) 稀释于 500 mL 无菌超纯水中。3. 计算所需细胞裂解 /蛋白酶 K 缓冲液体积：a. 每个 50 mL 离心管需要 5 mL 细胞裂解液（50 mM Tris:50 mM E
9、DTA, pH 8.0+1% Sarcosyl ） 。b. 每个 50 mL 离心管需要 25 L （20 mg/mL）蛋白酶 K 储液。c.将适当比例的细胞裂解液和蛋白酶K 储液混合均匀。注意：裂解液中蛋白酶K 的终浓度为0.1 mg/mL ，不同于细胞悬浮液中终浓度（0.5 mg/mL ） 。4. 往 50 mL 离心管中加入 5 mL 蛋白酶 K /细胞裂解液。5. 利用刀片小心切去胶栓中多余的琼脂糖胶，小心将胶块移至相应的离心管中。注意：多余胶块、模块、刀片受到污染则丢弃或适当灭菌。6. 重复利用胶栓处理，将胶栓、刀片等于 70%乙醇中浸泡 15min 灭菌处理，冲洗干净。丢弃一次性模
10、具，如果重复利用则用 10%漂白剂处理 30-60 min，冲洗干净。7. 将 50 mL 离心管置于 54-55恒温摇床中， 150-175 rpm处理 2 h。如果水浴处理，确保水浴液面高于管内裂解液液面。8. 用 10-15 mL 54-55预热无菌超纯水洗涤胶块。琼脂糖胶块洗涤注意：大部分实验室的胶块在54-55下都可以保持足够稳定。但是，如果你的胶块边缘出现缺口或者破裂，以下步骤可以在温度为50进行。1从水浴箱中取出离心管， 小心倾去裂解液于回收容器中， 胶块留在离心管内。注意：必须完全倾去离心管中的裂解液，剩余少量裂解液可以用滤纸吸干。2加入 54-55预热的 10-15 mL 无
11、菌超纯水，54-55水浴摇床中温育 10-15 min。名师资料总结 - - -精品资料欢迎下载 - - - - - - - - - - - - - - - - - - 名师精心整理 - - - - - - - 第 3 页，共 8 页 - - - - - - - - - 4 3倾去洗涤液，重复第二步。a54-55预热足够的 TE buffer，用于洗涤胶块4 次，每次 10-15 mL。4倾去洗涤液，加入 10-15 mL54-55预热的 TE buffer， 54-55水浴 10-15min，重复四次。5倾去洗涤液， 加入 5-10 mL 无菌 TE buffer，进行限制酶酶切步骤或者加入
12、TE buffer 于 4保存。注意：如果酶切步骤在同一天进行，完成以下酶切步骤的1-3 步。DNA 胶内酶切注意：整块胶块或者切成小块都可以进行酶切。建议切成小片进行胶内酶切，更少的酶获得更好的酶切效果。多余的胶块可以用于如Asc酶切 。1. 将培养物编号标记于1.5 mL 离心管中。a 可选预酶切温育步骤：制备酶切缓冲液如下：试剂L/ 胶块L/10小胶块L/15小胶块无菌超纯水180 L1800 L2700 L酶切缓冲液20 L200 L300 L总体积200 L2000 L3000 Lb 加入 200 L 酶切缓冲液于离心管中。c 小心将胶块移至无菌平板或者载玻片上，用刀片切成2.0-2
13、.5 mm 宽的胶片， 然后移至离心管中，并确保胶片在酶切缓冲液中。多余的胶块放置5 mL TE buffer中， 4保藏。注意：胶片形状和大小取决于梳子孔的大小。PulseNet 推荐 10 mm 宽的梳子，在计算机分析过程中得出的结果比5.5 mm 宽的梳子更为准确。所切胶片的完整情况、数量取决于操作员的熟练程度。d.Marker H9812 的胶块切去3-4 块 2.0 mm 宽的小胶块，移至稀释缓冲液中，并确保胶片在酶切缓冲液中。多余的胶块放置5 mL TE buffer中， 4保藏。e.将胶块于25（Apa ）或 37（Asc）温育 5-10min 或室温下温育10-15min 。f
14、.用移液枪将缓冲液移去，注意不要损坏小胶片或在吸取缓冲液过程中带走胶片。2. 按照产品说明书准备酶切缓冲液，根据下面表格加入相应浓度的限制性内切酶 Apa（50 U/样品）或 Asc（40 U/样品） 。在离心管中充分混匀。名师资料总结 - - -精品资料欢迎下载 - - - - - - - - - - - - - - - - - - 名师精心整理 - - - - - - - 第 4 页，共 8 页 - - - - - - - - - 5 试剂L/ 胶块L/10胶块L/15胶块无菌超纯水173L1730 L2595 L限制酶切缓冲液20 L200 L300 LBSA 2 L20 L30 LAp
15、a（10 U/L ）5 L50 L75 L总体积200 L2000 L3000 L试剂L/ 胶块L/10胶块L/15胶块无菌超纯水174L1740 L2610 L限制酶切缓冲液20 L200 L300 LBSA 2 L20 L30 LAsc（10 U/L ）4 L40 L60 L总体积200 L2000 L3000 L注意：限制性内切酶始终置于冰上或者绝缘保温盒（-20）中。3. 每支离心管加入 200 L 限制性内切酶缓冲液， 温和混匀， 确保胶块处于缓冲液中。在相应的最适酶切温度下水浴酶切2-3 h。aApa 最适酶切温度为25。bAsc最适酶切温度为37。制备 SKG 琼脂糖胶1. 确保
16、水温处于 55-60。2. 根据下表准备足够的0.5 TBE 缓冲液。5 TBE 试剂体积（ mL）5 TBE 200 210 220 230 240 250 试剂级纯水1800 1890 1980 2070 2160 2250 0.5 TBE 2000 2100 2200 2300 2400 2500 10 TBE 试剂体积（ mL）5 TBE 100 105 110 115 120 125 试剂级纯水1900 1995 2090 2185 2280 2375 0.5 TBE 2000 2100 2200 2300 2400 2500 名师资料总结 - - -精品资料欢迎下载 - - - -
17、 - - - - - - - - - - - - - - 名师精心整理 - - - - - - - 第 5 页，共 8 页 - - - - - - - - - 6 3. 用 0.5 TBE 制备 1%金琼脂糖凝胶，步骤如下：a 称取适量SKG 于三角瓶中；b 加入相应体积的0.5 TBE，摇匀，微波加热直至完全溶解；c 将溶解的SKG 置于 55-60水浴备用。4. 2-5 mL 的 55-60SKG 用于封闭注入的酶切胶块。 未用完的 SKG 置于室温下保存，可以重复利用。5. 制备 SKG，在水平桌面上倾注溶解的SKG，梳子插入深度大约为2 mm。6. 55-60的 SKG 水浴 15-2
18、0min，倾注于制胶模块中，避免产生气泡。7. 在电泳槽中注入 2.2 L0.5TBE，盖上顶盖。8. 在跑胶前 30 min 开启冷却槽（ 14） ，供电开关和循环水泵（ 1 L/min）预冷电泳缓冲液。9. 从 37水浴中移出酶切胶块，弃去酶切缓冲液并加入200 L 0.5 TBE，室温下温育 5 min。10. 待 SKG 完全凝固之后拔出梳子，将相应的酶切后胶块注入相应的梳子孔中，轻轻将胶块推至梳子孔底部并且置于梳子孔的前端，避免产生气泡。a 将 marker H9812 胶块置于1、5、10 梳子孔（ 10 孔梳子）中或者1、5、10、 15（15 孔梳子）梳子孔中。b 其他梳子孔注
19、入样品胶块。注意：注入胶块费时费力，实验人员需要提高其注入胶块的水平以确保电泳条带单一且尖锐。11. 用预热的 1% SKG 封闭梳子孔，凝固3-5 min。除去侧旁多余的琼脂糖凝胶。将琼脂糖凝胶放入电泳槽中，盖上顶盖。电泳程序1a. 在 CHEF Mapper 中选择如下电泳程序进行电泳(Asc或 Apa酶切) ：Auto algorithm 49 kb-low MW 450 kb-high MW Select default values except where noted by pressing “enter ”.Initial switch time = 4.0 s Final sw
20、itch time = 40.0 s Change run time to 18-19 h. 名师资料总结 - - -精品资料欢迎下载 - - - - - - - - - - - - - - - - - - 名师精心整理 - - - - - - - 第 6 页，共 8 页 - - - - - - - - - 7 1b. 选择 CHEF-DR 程序：Initial switch time: 4.0 s Final switch time: 40.0 s Voltage: 6 V Included angle: 120Run time: 18-19 h 1c. 选择 CHEF-DR 程序：Init
21、ial switch time: 4.0 s Final switch time: 40.0 s Start ratio: 1.0（if applicable）Voltage: 200 V Run time: 18-19 h 注意：推荐的电泳时间仅基于CDC 的仪器和试剂，不一定适用于所有实验室。可以根据H9812最低分子量迁移至离底部1.0-1.5 cm 确定最佳电泳时间。注意：留意最初电泳电流大小。起初电流处于110-170 mA。 如果电流大小超出范围表示0.5 TBE缓冲液配制出现问题，重新配制电泳缓冲液。Day 2 PFGE 琼脂糖凝胶染色及图像保存1. 电泳完毕，取出琼脂糖凝胶，配
22、制溴化乙锭染色液。40 L （10 mg/mL）溴化乙锭加入 400 mL 试剂级超纯水中稀释（ 14 cm 24 cm 容器） ，在有盖容器中染色 20-30min。注意： 溴化乙锭具有毒性并且致癌。溴化乙锭储液可以商业购得。溴化乙锭稀释液保存于棕色瓶中可以反复使用6-8 次。 CDC 不建议直接将溴化乙锭倒入下水道，建议利用活性炭、焦炭或者茶包吸附溴化乙锭后再倒入下水道。2. 用 500 mL 超纯水脱色 60-90 min，每 20 min 换超纯水一次；将琼脂糖凝胶置于 GE CCD capture 仪器中采集图像。确保图像是整胶图像并且以.tif 形式保存，便于后续分析。确保图像聚焦
23、良好且不要曝光过度。3. 如果电泳槽在短期几天不在使用的话，倾倒电泳缓冲液并以2 L 超纯水冲洗电泳槽。开启循环水泵清洗循环系统。名师资料总结 - - -精品资料欢迎下载 - - - - - - - - - - - - - - - - - - 名师精心整理 - - - - - - - 第 7 页，共 8 页 - - - - - - - - - 8 如果在 24-28 h 实验操作程序中没有获得良好的实验结果请注意：1. 胶块裂解时间适当延长（3-16 h ） ；2. 洗涤胶块阶段可以适当延长时间 （30-45 min） 并且降低温度 （37或室温），可以 4保存过夜。3. 延长限制性内切酶酶切
24、时间（3-16 h ） 。4. 如果 H9812最小分子量条带未迁移至离底部1-1.5 cm ，优化电泳时间。附录：1.Tris:EDTA Buffer, pH 8.0(TE,10 mM Tris:1 mM EDTA, pH 8.0) 10 mL 1M Tris, pH 8.0 2 mL 0.5 M EDTA, pH 8.0 稀释于 1000 mL 无菌超纯水中。2.细胞裂解缓冲液（50 mM Tris:50 mM EDTA, pH 8.0+1% Sarcosyl）25 mL 1 M Tris ，pH 8.0 50 mL 0.5 M EDTA, pH 8.0 50 mL 10% sarcosy
25、l (N-laurolsarcosine, Sodium salt) 稀释于 500 mL 无菌超纯水中。或者5 g（10 g）sarcosyl (N-laurolsarcosine, Sodium salt) 稀释于 500 mL（1000 mL）无菌超纯水中。用前每 5 mL 细胞裂解缓冲液加入25 L的蛋白酶K 储液（ 20 mg/mL ） ，蛋白酶 K 终浓度为0.1 mg/mL 。3.10 TBE 缓冲液Tris：108 g/L EDTANa22H2O：7.44 g/L 硼酸： 55 g/L pH 8.3。By cmtoon 2012.7.26 名师资料总结 - - -精品资料欢迎下载 - - - - - - - - - - - - - - - - - - 名师精心整理 - - - - - - - 第 8 页，共 8 页 - - - - - - - - -