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1、精选优质文档-倾情为你奉上绵阳师范学院本科生毕业论文（设计）题 目 脂肪酶产生菌M-6-2发酵条件的优化 专 业 生 物 技 术 院 部 生命科学与技术学院 学 号 姓 名 杜 长 蔓 指 导 教 师 李 俊 刚 答 辩 时 间 2012年5月 论文工作时间：2011 年 7 月 至 2012 年 5 月脂肪酶产生菌M-6-2发酵条件的优化学 生：杜长蔓指导老师：李俊刚摘 要：本文对绵阳师范学院微生物实验室筛选和鉴定的产脂肪酶细菌M-6-2的生长动力学和产酶动力学进行了研究；通过单因素实验和正交试验，对脂肪酶产生菌M-6-2 摇床发酵产脂肪酶的培养基组成和培养条件进行优化，得出较佳的产酶培养基
2、组成配方为：1.5%淀粉+0.5%酵母膏为碳源、 4.5%豆饼粉+1.5%硝酸铵为最佳的氮源、0.05%磷酸氢二钠和0.15%硫酸镁；最优的发酵条件为：初始pH7.5，接种量1.5 %，装液量20ml/250ml，发酵温度35，在转速180r/min下，培养16h，经过优化后发酵液脂肪酶酶活力最高可达到15.60 U/ml,较优化前提高了49.57%。脂肪酶产生菌M-6-2与国内文献报道的产脂肪酶细菌相比产酶活力高。对该菌株发酵条件进行优化后，为生产性试验打下了基础。关键词：脂肪酶产生菌M-6-2；脂肪酶；发酵条件；优化；正交试验；Lipase to produce bacteria M-6-
3、2 Optimization of fermentation conditionsUndergraduate: Du ChangmanSupervisor: Li Jun GangAbstract: In this paper, Laboratory screening and identification of lipase production by bacteria in the M-6-2 growth kinetics and enzyme production kinetics were studied; through single factor experiments and
4、orthogonal test, the lipase to produce bacteria M-6-2 shaker fermentation lipase medium composition and culture conditions were optimized to come to a better enzyme production medium composition formula: 1.5% starch and 0.5% yeast extract as carbon source, 4.5% of the soybean powder and 1.5% ammoniu
5、m nitrate for the best source of nitrogen, 0.05% disodium hydrogen phosphate and 0.15% magnesium sulfate. Optimal fermentation conditions were: initial pH 7.5, 1.5% of the inoculum size, liquid volume 20ml/250ml, fermentation temperature 35 C, in the speed 180r/min next, cultured 16h After optimizat
6、ion of the fermentation broth lipase activity can reach 49.57% to 15.60 U / ml, compared to before optimization. Lipase to produce bacteria M-6-2 and reported in China in the production of lipase bacteria compared to the high activity of enzyme production. Of the strain fermentation conditions optim
7、ized, laid the foundation for the production of test.Key words: Lipase producing strain M-6-2；lipase ；fermentation conditions；optimization ；orthogonal test 目 录专心-专注-专业1前言1.1脂肪酶的概况脂肪酶酶EC 3.1.1.3又称三酰基甘油酰基水解酶（acylglycerol hydrolases）1，是一类具有多种催化能力的酶，广泛存在于动植物、植物及微生物中。脂肪酶具有多种催化能力，能够催化酯类的醇解，水解，转酯，酯化化及酯类的逆向
8、合成反应23456。除此之外，还表现出其他一些酶的活性，如磷脂酶、胆固醇酯酶、溶血磷脂酶、酰肽水解酶活性等。脂肪酶不同活性的发挥依赖于反应体系的特点，如在油水界面促进酯水解，而在有机相中可以酶促合成和酯交换，它具有化学选择性和立体异构专一性，反应不需要辅酶，反应条件温和，副产物少，因此被广泛的应用于轻纺、食品、皮革、化妆品、香料、医药、有机合成、洗涤剂 、污水处理等7。微生物脂肪酶种类多、易发生遗传与变异，繁殖快，pH值范围及作用温度比动植物脂肪酶广，而且底物专一性高，而且微生物来源的脂肪酶一般都是分泌性的胞外酶，便于工业生产以获得较高纯度的酶制剂，已成为工业生产脂肪酶的主要来源，并在理论援救
9、方面也具有重要的意义。脂肪酶是一种特殊的酯键水解酶，它可作用于甘油三酯的酯键，使甘油三酯降解为单酯油酯、甘油二酯、脂肪酸和甘油。作为一种高效无污染的脱脂剂，脂肪酶在皮革脱脂工艺上尤其具有重要的用途，它可以把不易皂化，难溶于水的脂肪分解为易溶于水的脂肪酸和甘油，且在碱性条件下使得脂肪更容易从皮中除去。与传统的乳化法、皂化法和溶剂法脱脂相比较，酶法脱脂皮板柔软，对皮革质量有明显的提高。脂肪酶还可以作为临床诊断胰腺炎、脂血病等疾病的依据之一，市场上也已经有作血脂分析用的酶制剂出售。屠宰场、餐饮业、奶制品加工厂等产生的废水中富含易生物降解的有机物和难生物降解的油脂。普通餐饮废水中油脂含量为100 83
10、1 mg/L8，如果不经处理直接排放，会造成环境的严重污染。油脂漂浮在水面形成油膜，阻碍氧气传输，从而威胁水生动植物的生存9。目前的油脂废水处理工艺有生态处理和生物处理。生物处理技术包括厌氧、好氧以及二者组合工艺。采用生物反应器处理油脂废水时，油脂包裹在污泥表面，阻碍了传质作用，降低了底物转化速率10；此外，反应器中丝状菌大量繁殖，油脂附着在污泥表面，造成污泥沉降困难，易导致活性污泥的大量流失。在上述情况下，反应器会出现恶臭气味溢散和堵塞等运行问题。采用人工湿地等生态法处理油脂废水也很容易出现堵塞现象11。目前，成熟的油脂降解技术尚未出现，而国家规定的污水排放标准日益严格，油脂废水处理技术的改
11、进非常需要。 对于饮食习惯中，油占重要部分的国家，油脂废水处理难题尤为突出。由于微生物资源丰富，生产不受自然环境的影响，可用人工控制来大量生产目的酶，生产成本低，产酶周期短，是一种经济而实用的方法。脂肪酶在微生物界分布很广，土壤是微生物的大本营，不同土壤中的微生物所产生脂肪酶性能不尽相同。其产生菌主要是细菌和霉菌 12。已经公布的适用于甘油三酯加工的不同来源的脂肪酶有33种，其中7种是细菌，18种是霉菌。目前报道的用于产生脂肪酶的微生物主要有无根根霉(Rhizopus arrhizus)13、扩展青霉(Penicillium expansum)14、假丝酵母(Candidarugosa)15、
12、假单孢菌(Pseudomonas sp.)16等, 其中从根霉菌中已分离到30 多种脂肪酶, 且有多种根霉脂肪酶已被制成商品化酶制剂17。1.2国内外脂肪酶的研究概况脂肪酶作为生物催化剂可催化由不同底物出发的合成和水解反应，这些反应通常具有对映选择性，区域性或，高底物专一性，使脂肪酶成为有机合成中重要的生物催化剂。近年来，微生物脂肪酶在各种不同行业得到了广泛的应用，主要是利用脂肪酶的水解反应，水解反应是指脂肪酶催化脂肪或脂水解为其组成脂肪酸和甘油或醇，以此应用脂肪酶的方面及行业包括：污水处理、脂肪酸提纯、脂肪水解、甘油酯结构的测定、生产纸浆和造纸、皮革、加酶洗涤剂、医学应用、食品成分、底纸脱墨
13、等；其次，应用脂肪酶合成作用的包括低中相对分子质量聚脂、脂、手性化合物的合成、药物、油脂改性和化妆品等。2003年，中国极地研究中心的俞勇18等，从南极乔治王岛冻土来源的76 株低温细菌中，筛选到13 株低温脂肪酶产生菌,并对其中的BTs10022 菌株进行了鉴定和酶学性质的初步研究；2004 年邵铁娟19等对渤海海泥中筛选到的一株产低温脂肪酶微生物进行了菌种鉴定及产脂肪酶发酵条件的研究；2006 年,张金伟20等从南极普里兹湾深海沉积物中筛选到一株产低温脂肪酶菌株7195 ,并对其进行了鉴定和初步分离纯化；其中南极假丝酵母脂肪酶B 的污水处理方面用途最为广泛，该酶从南极假丝酵母( Candi
14、da antarctica) 中分离得到，对非水溶性和水溶性物质都有极强的催化活性21；Cihangir 和Sarikaya22从土耳其土样中分离了一株曲霉菌，在pH 5.5、温度30 下培养96 h 获得了酶活为17U/ml的脂肪酶；Azeredo 等23针对青霉菌展开液态发酵和固态发酵研究，在pH 5.5、温度30 下液态发酵96 h 获得了酶活为12 U/ml 的脂肪酶，而在湿度70%、温度30下固态发酵24 h 获得了酶活为17 U/g的脂肪酶。尽管目前已经对脂肪酶产生菌展开了一些研究,但有关产脂肪酶细菌的报道还不多,作者从自然界中分离和筛选得到一株产脂肪酶细菌M-6-2,显示其可以分
15、泌脂肪酶的高产菌株,故对其产酶发酵条件进行了优化。使其产酶活力更高，为生产性试验奠定基础。1.3本研究的目的及意义 随着对脂肪酶研究的日益深入，其应用领域正日渐拓宽，与此相应，新型脂肪酶的研究开发就备受关注24。通过对原有脂肪酶改进或对菌株进行优化培养可得到新型的脂肪酶25。本研究的具体目标是对产脂肪酶的细菌M-6-2发酵条件的优化，为中试、生产性试验提供参考数据，从而提高其产脂肪酶酶活力，使其产酶达到国内先进水平。该菌种如果应用于生产，将对屠宰厂、肉联厂、大型食堂等含油脂的污水厂废水处理带来巨大的社会效益和环境生态效益。2实验材料和器具2.1 实验菌种本实验采用从绵阳六里村屠宰场废水沟的污泥
16、中筛选和鉴定出的的脂肪酶高产菌株M-6-2。2.2 主要实验仪器 移液管（10ml）；磁力搅拌器；酸式滴定管（25ml）；碱式滴定管（25ml）； SPX-250B-生化培养箱（上海康华生化仪器制造厂出产）； HZ-9311K恒温振荡器（金坛市新航仪器厂出产）； SP-DJ系列超净工作台（吴江市净化设备总厂出产）； 手提式高压灭菌锅（上海三中医疗器械有限公司出产）； 申溢牌电热不绣钢蒸馏水器（上海三中医疗器械有限公司出产）；冰箱（BCD-216E/BN 海尔集团公司）；电热恒温鼓风干燥箱（DHG-9053A型 上海精宏实验设备有限公司）； 高速冷冻离心机（贝克曼库尔特实验系统有限公司广州分公司
17、）； 电子万用炉（220V.AC 1000W，北京市永光明医疗仪器厂）；FA1104A电子天平（上海精天电子仪器有限公司）；Sartorius BP211D电子天平（德国赛多利斯公司）；HHS-2数显恒温水浴锅（上海康华生化仪器制造有限公司）；721型紫外可见分光光度计（Amersham biosciences）；2.3 实验试剂a) 0.05mol/L氢氧化钠标准滴定溶液：称取分析纯的氢氧化钠4.5g用蒸馏水溶解定容至1000ml（约0.1mol/L氢氧化钠），用邻苯二甲酸氢钾标定，然后再用蒸馏水稀释至0.05mol/L。储存于附有钠石灰管的玻璃瓶中；b) 2%的聚乙烯醇溶液：取20g聚乙烯
18、醇加蒸馏水约1000mL，水浴加热至溶，冷却后定容至1000mL，配成2%的聚乙烯醇溶液，双层纱布过滤备用；c) 聚乙烯醇橄榄油乳化液：将橄榄油与上述2%的聚乙烯醇溶液以1：3的比例混合。用高速组织捣碎机处理6min，分两次，每次3min，间隔5min，即成乳白色聚乙烯醇橄榄油乳化液；d) 酚酞试剂：称取酚酞0.1g，溶于250ml 90%的乙醇中；e) 丙酮乙醇混合液：将丙酮和乙醇按1:1混合；f) 磷酸缓冲液（0.1mol/L，pH7.5）：0.2 mol/L磷酸氢二钠84ml，0.2 mol/L磷酸二氢钠16ml，加蒸馏水稀释至200ml。2.4培养基26斜面培养基：0.2% NaNO3
19、，0.1% Na2HPO4，0.05%KCl，0.05% MgSO4，0.001% FeSO4，3%蔗糖，1.5%-2.0%琼脂。种子培养基：0.5%葡萄糖，2%黄豆饼粉，0.5%酵母膏，1% NaNO3，0.1% Na2HPO4，0.05%KCl，0.05% MgSO4，0.001% FeSO4。初始设计发酵培养基：4%黄豆饼粉，1%橄榄油，1% NaCl，0.1% Na2HPO4，0.05%KCl，0.05% MgSO4，0.001% FeSO4。生长曲线的测定3 实验流程产酶曲线的测定菌体生长条件的确定实验流程脂肪酶培养基的优化脂肪酶发酵条件的优化4. 实验方法4.1 生长曲线的测定27
20、（1）制配种子培养基和初始发酵培养基，0.1MPa灭菌30min，备用；（2）将受试菌种在斜面培养基上活化，培养成熟；（3）从成熟斜面上挑取5环菌苔或孢子接入7ml无菌水中，摇匀，吸取0.5ml菌悬液接发酵培养基中，一共接13瓶；（4）将三角瓶放入摇床上，在复筛确定的适合的条件下培养，即30 , 180 r /min；（5）每隔4h拿出一瓶(包括0h)，以不接种的培养基作对照，在560nm处测吸光度值，填入下列表1-1；（6）以培养时间为横坐标，吸光度值为纵坐标，作生长曲线。表1-1 生长曲线的测定Table 1-1 Determination of growth curve培养时间/h081
21、624324048566472808896OD值4.2 产酶曲线的测定(1）制配种子培养基和初始发酵培养基，0.1MPa灭菌30min，备用；（2）将受试菌种在斜面培养基上活化，培养成熟；（3）从成熟斜面上挑取5环菌苔或孢子接入7ml无菌水中，摇匀，吸取0.5ml菌悬液接发酵培养基中，一共接13瓶；（4）将三角瓶放入摇床上，在复筛确定的适合的条件下培养，即30 , 180 r /min；（5）每隔4h取出一瓶(包括0h)，进行酶活力的测定，并填入下列表1-2；（6）以培养时间为横坐标，以酶活力为纵坐标，绘制出产酶曲线。表1-2 产酶曲线的测定able 1-2 for enzyme produc
22、tion curve determination培养时间/h04812162024283236404448酶活/U4.3 脂肪酶产生菌M-6-2菌体生长的最佳条件的确定4.3.1 pH对M-6-2菌体生长的影响（1）制配种子培养基和初始发酵培养基，0.1MPa灭菌30min，备用；（2）将受试菌种在斜面培养基上活化，培养成熟；（3）从成熟斜面上挑取5环菌苔或孢子接入7ml无菌水中，摇匀，吸取0.5ml菌悬液接发酵培养基中，一共接11瓶；（4）将三角瓶放入摇床上，在复筛确定的适合的条件下培养，其中pH值，分别为4.0、4.5、5.0、5.5、6.0、6.5、7.0、7.5、8.0、8.5、9.0
23、（根据初筛和复筛确定），即30 , 180 r /min；（5）放在相同的条件下培养24h后，以不接种的培养基作对照，在560nm处测吸光度值，填入下列表1-3；（6）以培养的pH值为横坐标，吸光度值为纵坐标，作曲线。表1-3生长最佳pHTable 1-3 growth optimum pH培养pH值4.04.55.05.56.06.57.07.58.08.59.0OD值4.3.2 温度对M-6-2菌体生长的影响（1）制配种子培养基和初始发酵培养基，0.1MPa灭菌30min，备用；（2）将受试菌种在斜面培养基上活化，培养成熟；（3）从成熟斜面上挑取5环菌苔或孢子接入7ml无菌水中，摇匀，吸取
24、0.5ml菌悬液接发酵培养基中，一共接11瓶；（4）将三角瓶放入摇床上，在复筛确定的适合的条件下培养，其中温度分别为20、22、24、26、28、30、32、34、36、38、40（根据初筛和复筛确定）， 180 r /min；（5）放在相同的条件下培养24h后，以不接种的培养基作对照，在560nm处测吸光度值，填入下列表1-4；（6）以培养温度为横坐标，吸光度值为纵坐标，作曲线。表1-4 生长最佳温度Table 1-4 optimum growth temperature培养温度2022242628303234363840OD值4.3.3 装液量对M-6-2菌体生长的影响（1）制配种子培养基
25、和初始发酵培养基，0.1MPa灭菌30min，备用；（2）将受试菌种在斜面培养基上活化，培养成熟；（3）从成熟斜面上挑取5环菌苔或孢子接入7ml无菌水中，摇匀，吸取0.5ml菌悬液接发酵培养基中，一共接11瓶；（4）将三角瓶放入摇床上，在复筛确定的适合的条件下培养，其中装液量，分别为每250ml三角瓶中为10ml、12ml、14ml、16ml、18ml、20ml、22ml、24ml、26ml、28ml、30ml（根据初筛和复筛确定），30 ，180 r /min；（5）放在相同的条件下培养24h后，以不接种的培养基作对照，在560nm处测吸光度值，填入下列表1-5；（6）以培养的pH值为横坐标
26、，吸光度值为纵坐标，作曲线表1-5 装液量的影响Table 1-5 installed the influence of the fluid volume装液量/ml1012141618202224262830OD值4.3.4 摇床转速对M-6-2菌体生长的影响（1）制配种子培养基和初始发酵培养基，0.1MPa灭菌30min，备用；（2）将受试菌种在斜面培养基上活化，培养成熟；（3）从成熟斜面上挑取5环菌苔或孢子接入7ml无菌水中，摇匀，吸取0.5ml菌悬液接发酵培养基中，一共接7瓶；（4）将三角瓶放入摇床上，在复筛确定的适合的条件下培养，其中摇床转速，分别为160 r /min、170 r
27、/min、180 r /min、190 r /min、200 r /min、210 r /min、220 r /min（根据初筛和复筛确定），30；（5）放在相同的条件下培养24h后，以不接种的培养基作对照，在560nm处测吸光度值，填入下列表1-6；（6）以培养的pH值为横坐标，吸光度值为纵坐标，作曲线。表1-6 摇床转速对M-6-2菌体生长的影响Table 1-6 of the rotation speed of the M-6-2 cell growth摇床转速r/min160170180190200210220OD值4.4 脂肪酶培养基的优化284.4.1 脂肪酶培养基单因素条件的优化
28、4.4.1.1最佳碳源的优化 以初始设计发酵培养基为基础，分别将橄榄油替换为葡萄糖、淀粉、酵母膏、麦芽糖、蔗糖、乳糖；接种体积分数均为1%，30，180r/min条件下摇瓶培养16h后，用滴定法测酶活，以确定碳源对发酵产酶的影响。4.4.1.2 复合碳源的优化 以初始设计发酵培养基为基础，分别将橄榄油替换为淀粉和酵母膏（最佳碳源优化的结果），按不同成分比例混合后，以1%的含量分别作为培养基中的碳源，接种体积分数均为1%，30，180r/min条件下摇瓶培养16h后，用滴定法测酶活，以确定碳源对发酵产酶的影响。 4.4.1.3 最佳氮源的优化以初始设计发酵培养基和上述优化的条件为基础，分别将黄豆
29、粉替换为豆饼粉和硝酸铵，按不同成分比例混合后，以4%的含量分别作为培养基中的氮源；接种体积分数均为1%，30，180r/min条件下摇瓶培养16h后，用滴定法测酶活，以确定氮源对发酵产酶的影响。4.4.1.4 复合氮源的优化以初始设计发酵培养基和上述优化的条件为基础，分别将黄豆粉替换豆饼粉和硝酸铵（最佳氮源优化的结果）；接种体积分数均为1%，30，180r/min条件下摇瓶培养16h后，用滴定法测酶活，以确定氮源对发酵产酶的影响。4.4.1.5 最佳无机盐的优化以初始设计发酵培养基上述优化的条件为基础，分别将无机盐替换为硝酸钠、磷酸氢二钠、氯化钾、硫酸镁、硫酸铁；接种体积分数均为0.1%，30
30、，180r/min条件下摇瓶培养16h后，用滴定法测酶活，以确定无机盐对发酵产酶的影响4.4.2 产脂肪酶培养基的正交试验（1）选择豆饼粉+硝酸铵（豆饼粉：硝酸铵=3:1）(2%、4%、6%)、淀粉+酵母膏（淀粉：酵母膏=3:1）（1%、2%、3%）、磷酸氢二钠（0.05%、0.1%、0.15%）、硫酸镁(0.05%、0.1%、0.15%)这四个因素，每一因素设定3个水平，按下表1-3配置9组培养基（W/V），分装于250ml三角瓶中，每瓶25ml。用8层纱布包扎后于0.1MPa灭菌30min；（2）接种：挑取斜面菌苔5环接入5ml无菌水中，摇匀后用无菌移液管吸取0.5ml菌悬液，接到每一组培
31、养基中（接种量要完全一样）；（3）发酵：将三角瓶放于摇床上，30，180 r /min摇床培养16h；（4）取下摇瓶，立即进行酶活力的测定，比较各组培养基配方的酶活力，确定最佳的培养基配方。表1-6 产脂肪酶培养基的正交试验Table 1-6 Lipase Production orthogonal test medium 因素水平A 豆饼粉+硝酸铵B淀粉+酵母膏C磷酸氢二钠 D硫酸镁 1 2% 1% 0.05% 0.05% 2 4%2%0.1% 0.1% 36% 3% 0.15% 0.15%4.5 脂肪酶发酵条件优化294.5.1 发酵条件单因素条件优化4.5.1.1 培养基初始pH的优化
32、将优化后的培养基配好后，在复筛的基础上，用1mol/L的氢氧化钠或1mol/L的氯化氢分别调节培养基pH至4.0、5.0、6.0、7.0、8.0、9.0（根据初筛和复筛的条件），分别至250ml三角瓶中，每瓶25ml，0.1MPa灭菌30min。冷却后以1%的接种量接种，在30恒温摇床上以180 r /min的转速培养16h，在同一时间取出，测定其酶活，确定产脂肪酶的的最佳初始pH。4.5.1.2 培养温度的优化 将优化后的培养基配好后，以上述优化的条件为基础，将培养基分别至250ml三角瓶中，每瓶25ml，0.1MPa灭菌30min。冷却后接种，1%的接种量，将接种后的三角瓶在20、25、3
33、0、35、40、45下（根据初筛和复筛的条件）摇床培养(180 r /min) 16h，在同一时间取出，测定其酶活，确定产脂肪酶的的最佳的培养温度。4.5.1.3 培养基装液量的优化 将优化后培养基配好后，以上述优化的条件为基础，在250ml的三角瓶中分装培养基，装量分别为10ml、20ml、25ml、30ml、35ml、40ml（根据初筛和复筛的条件），以8层纱布作为瓶口布，0.1MPa灭菌30min。1%的接种量，接种后，摇床培养(180 r /min) 16h，在同一时间取出，测定其酶活，确定产脂肪酶的的最佳的装液量。4.5.1.4 摇床转速的优化将优化后的培养基配好后，以上述优化的条件
34、为基础，在250ml的三角瓶中分装25ml的培养基，0.1MPa灭菌30min。接种后在150 r /min、160 r /min、180 r /min、200 r /min、220 r /min、240 r /min（根据初筛和复筛的条件）的摇床中摇瓶培养16h，在同一时间取出，测定其酶活，确定产脂肪酶的的最佳的摇床转速。4.5.1.5 接种量的优化 将优化后的培养基配好后，以上述优化的条件为基础， 将配好的培养基在0.1MPa灭菌30min。按接种量为0.5%、1.0%、1.5%、2.0%、2.5%、3.0%（根据初筛和复筛的条件）接种后，摇床中摇瓶培养16h，在同一时间取出，测定其酶活，
35、确定产脂肪酶的的最佳的接种量。4.5.2 产脂肪酶发酵条件的正交试验 经过发酵条件的单因素实验得知，选择以下的因素和水平，设制初始pH值（6.5、7.0、7.5）、装液量（250ml三角瓶装液量为15ml、20m、25ml）、接种量(1.5%/、2.0%、2.5%)、培养温度（25、30、35）四个因素三水平的正交试验，见表1-6。表1-7 因素水平表Table 1-7 of the factors the level of table水平因素A初始pH值B装液量mlC接种量%D培养温度16.5151.52527.0202.03037.5252.5355分析方法5.1脂肪酶酶活测定与计算方法3
36、0 采用橄榄油乳化法测定脂肪酶酶活31。5.2 酶活测定的原理 脂肪酶从橄榄油中分解出脂肪酸，这些脂肪酸又被过量添加的氢氧化钠中和，然后用氯化氢回滴，可测定出脂肪酸的量。5.3 酶活的定义 以 1分钟生成1u mol的脂肪酸所需的脂肪酶量定义为1个酶活力单位，记为1个U。5.4 酶活的测定在100ml的三角瓶中加入5.0ml 橄榄油乳化液（4%PVA:橄榄油=2:1）及4.0ml 0.05M的磷酸缓冲液（pH=7.5）并置于37水浴锅中预热10min，加入1ml发酵液滤液(为V)，塞上瓶塞充分振荡（每隔10min左右要重新摇动一次）。精确保温30min后加10ml丙酮乙醇混合液终止反应。加入1
37、0ml经过标定的0.05mol/L氢氧化钠溶液，再加10ml丙酮乙醇混合液和2滴酚酞，用经过标定的氯化氢滴定至颜色退去，30s不变色为终点，记录消耗的氯化氢的量V1。在相同条件下做空白对照，无须在37下保温30min，加了发酵液滤液后直接加入丙酮乙醇混合液即可进行后续操作。其氯化氢消耗的量为V2。5.5 酶活的计算方法：脂肪酶酶活力（Uml.min） =(V2-V1).M （V.t）式中，V1-滴定样液所消耗的HCl溶液的体积（ml）； V2-滴定空白样所消耗的HCl溶液的体积（ml）； V-酶液体积（ml）； t-反应时间（min）； M-滴定用的HCl溶液的浓度（mmol/L）。5.6 生
38、物量的测定 比浊法测定生物量32。将活化后的斜面菌株接入种子培养基中，于30,180 r /min摇床培养，每隔一定时间取样，用721型分光光度计在600nm下测其OD值。6 结果与讨论6.1 生长曲线的测定结果按照上述方法，进行生长曲线的测定，结果见表2-1。表2-1 生长曲线的测定Table2-1 Determination of growth curve培养时间/h061218243036424854606672OD值0.30.410.611.301.952.192.202.232.082.011.781.360.84根据表2-1，绘制出生长曲线，如图1所示。图1 生长曲线Figure
39、1 growth curve从图1中可以看出，接种于发酵培养基中的菌体M-6-2，1-12h 为它的生长延迟期，12-24h为它的生长对数期，24-54h 为它的生长稳定期，54h以后为它的衰退期。6.2 产酶曲线的测定结果按照上述方法，进行产酶曲线的测定，结果见表2-2。表2-2 产酶曲线的测定table 1-2 for enzyme production curve determination培养时间/h04812162024283236404448酶活力/U003.335.8310.5310.4310.3710.3310.3010.079.978.677.63根据表2-2，绘制出产酶曲线
40、，如图2所示。图2 产酶曲线Figure 2 enzyme production curve由图2可知，酶活力在16h达到最佳，16-40h保持稳定，到40h后开始下降。6.3菌体的生长和产酶动力学关系图2与图1比较可知，细菌菌体M-6-2在对数时期12h24h产酶达到最高水平，菌体生长和产酶相偶联，脂肪酶的生成速率随着菌体生长速率的增长而提高，属于呈正相关型。6.4 脂肪酶产生菌M-6-2菌体生长最佳条件的确定结果6.4.1 pH对M-6-2菌体生长的影响 按照实验方法所述进行实验，结果见表2-3。表2-3 生长最佳pHTable 1-3 growth optimum pH培养pH值4.04
41、.55.05.56.06.57.07.58.08.59.0OD值1.451.67 1.891.982.032.252.222.181.961.941.83 根据表2-3，绘制出曲线，如图3所示。图3 生长的最佳pHFigure 3 the optimal pH of the growth 由图3可知，菌体M-6-2生长的最佳的pH值为6.5。查文献可知，大多数产脂肪酶细菌最适pH 值693334，与此相符合。6.4.2 温度对M-6-2菌体生长的影响 按照实验方法所述，进行实验，结果见表2-4。表2-4 生长最佳温度Table 2-4 optimum growth temperature培养温
42、度2022242628303234363840OD值1.481.721.942.162.312.222.182.081.961.931.87根据表2-4，绘制出曲线，如图4所示。图4 生长最佳温度Figure 4 best growth temperature 由图4可知，菌体M-6-2生长的最佳的温度为28。查文献可知，大多数显示脂肪酶细菌的最佳温度范围介于30403536，与此基本相符合。6.4.3 装液量对M-6-2菌体生长的影响按照实验方法所述，进行实验，结果见表2-5。表2-5 装液量的影响Table 2-5 installed the influence of the fluid
43、volume装液量/ml1012141618202224262830OD值1.761.982.062.122.342.262.151.971.861.701.64根据表2-5，绘制出曲线，如图5所示。图5 装液量对菌体生长的影响Figure 5 liquid volume on cell growth 由图5可知，菌体M-6-2生长的最佳的装液量为18ml/250ml。装液量主要是和耗氧量有关，而且培养基中的碳源种类对菌体的耗氧量有很大的影响，好氧速率由大到小依次为，油脂或烃类葡萄糖蔗糖乳糖，本实验的碳源用的是橄榄油对耗氧量有很大的影响。6.4.4 摇床转速对M-6-2菌体生长的影响按照实验方法所述，进行实验，结果见表2-6。表2-6 摇床转速对M-6-2菌体生长的影响Table 2-6 of the rotation speed of the M-6-2 cell growth摇床转速r/min160170180190200210220OD值2.032.272.332.292.141.981.83根据表2-6，绘制出曲线，如图6所示。图6 摇床转速对M-6-2菌体生长的影响Figure 6 Effect of shaking speed on the M-6-2 cell growth 由图6可知，