微生物细胞大小的测定方法.pdf

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1、微生物细胞大小测定微生物细胞大小测定一、实验目的了解目镜测微尺和镜台测微尺的构造和使用原理,掌握微生物细胞大小的测定方法。了解目镜测微尺和镜台测微尺的构造和使用原理,掌握微生物细胞大小的测定方法。二、实验原理微生物细胞的大小是微生物重要的形态特征之一,由于菌体很小,只能在显微镜下来测量。微生物细胞的大小是微生物重要的形态特征之一,由于菌体很小,只能在显微镜下来测量。用于测量微生物细胞大小的工具有目镜测微尺和镜台测微尺。用于测量微生物细胞大小的工具有目镜测微尺和镜台测微尺。目镜测微尺(图目镜测微尺(图-1-1)是一块圆形玻片,在玻片中央把)是一块圆形玻片,在玻片中央把 5mm5mm 长度刻成长度

2、刻成 5050 等分,或把等分,或把 10 mm10 mm 长长度刻成度刻成 100100 等分。等分。测量时,测量时,将其放在接目镜中的隔板上将其放在接目镜中的隔板上( (此处正好与物镜放大的中间像重叠此处正好与物镜放大的中间像重叠) )来测来测量经显微镜放大后的细胞物象。由于不同目镜、物镜组合的放大倍数不相同,目镜测微尺每格量经显微镜放大后的细胞物象。由于不同目镜、物镜组合的放大倍数不相同,目镜测微尺每格实际表示的长度也不一样,因此目镜测微尺测量微生物大小时须先用置于镜台上的镜台测微尺实际表示的长度也不一样,因此目镜测微尺测量微生物大小时须先用置于镜台上的镜台测微尺校正,以求出在一定放大倍

3、数下,目镜测微尺每小方格所代表的相对长度。校正,以求出在一定放大倍数下,目镜测微尺每小方格所代表的相对长度。镜台测微尺(图镜台测微尺(图 20-220-2)是中央部分刻有精确等分线的载玻片,一般将)是中央部分刻有精确等分线的载玻片,一般将 lmmlmm 等分为等分为 100100 格,每格,每格长格长 l0 l0mm(即),是专门用来校正目镜测微尺的。校正时,将镜台测微尺放在载物台上,(即),是专门用来校正目镜测微尺的。校正时,将镜台测微尺放在载物台上,图图 1 1 目镜测微尺目镜测微尺图图 2 2 镜台测微尺镜台测微尺由于镜台测微尺与细胞标本是处于同一位置,都要经过物镜和目镜的两次放大成象进

4、入视野,由于镜台测微尺与细胞标本是处于同一位置,都要经过物镜和目镜的两次放大成象进入视野,即镜台测微尺随着显微镜总放大倍数的放大而放大,因此从镜台测微尺上得到的读数就是细胞即镜台测微尺随着显微镜总放大倍数的放大而放大,因此从镜台测微尺上得到的读数就是细胞的真实大小,所以用镜台测微尺的已知长度在一定放大倍数下校正目镜测微尺,即可求出目镜的真实大小,所以用镜台测微尺的已知长度在一定放大倍数下校正目镜测微尺,即可求出目镜测微尺每格所代表的长度,然后移去镜台测微尺,换上待测标本片,用校正好的目镜测微尺在测微尺每格所代表的长度,然后移去镜台测微尺,换上待测标本片,用校正好的目镜测微尺在同样放大倍数下测量

5、微生物大小。同样放大倍数下测量微生物大小。三、实验器材1 1活材料:酿酒酵母活材料:酿酒酵母( (Saccharomyces cerevisiaeSaccharomyces cerevisiae) )、枯草杆菌、枯草杆菌( (Baccillus subtilisBaccillus subtilis) )染色标本片。染色标本片。2 2器材:显微镜、目镜测微尺、镜台测微尺、擦镜纸。器材:显微镜、目镜测微尺、镜台测微尺、擦镜纸。四、实验方法1 1目镜测微尺的校正目镜测微尺的校正 把目镜的上透镜旋下,将目镜测微尺的刻度朝下轻轻地装入目镜的隔板把目镜的上透镜旋下,将目镜测微尺的刻度朝下轻轻地装入目镜的隔

6、板上,把镜台测微尺置于载物台上,刻度朝上。先用低倍镜观察,对准焦距,视野中看清镜台测上,把镜台测微尺置于载物台上,刻度朝上。先用低倍镜观察,对准焦距,视野中看清镜台测微尺的刻度后,转动目镜,使目镜测微尺与镜台测微尺的刻度平行,移动推动器,使两尺重叠,微尺的刻度后,转动目镜,使目镜测微尺与镜台测微尺的刻度平行,移动推动器,使两尺重叠,再使两尺的“再使两尺的“0 0”刻度完全重合,定位后,仔细寻找两尺第二个完全重合的刻度,计数两重合刻”刻度完全重合,定位后,仔细寻找两尺第二个完全重合的刻度,计数两重合刻度之间目镜测微尺的格数和镜台测微尺的格数。度之间目镜测微尺的格数和镜台测微尺的格数。因为镜台测微

7、尺的刻度每格长因为镜台测微尺的刻度每格长 l0 l0mm, 所以由下所以由下列公式可以算出目镜测微尺每格所代表的长度。列公式可以算出目镜测微尺每格所代表的长度。例如目镜测微尺例如目镜测微尺 5 5 小方格正好与镜台测微尺小方格正好与镜台测微尺 5 5 小方格重叠,已知镜台测微尺每小方格为小方格重叠,已知镜台测微尺每小方格为 l0 l0mm,则目镜测微尺上每小方格长度为则目镜测微尺上每小方格长度为=5=51010m/5m/51010mm用同法分别校正在高倍镜下和油镜下目镜测微尺每小方格所代表的长度。用同法分别校正在高倍镜下和油镜下目镜测微尺每小方格所代表的长度。由于不同显微镜及附件的放大倍数不同

8、,因此校正目镜测微尺必须针对特定的显微镜和附件由于不同显微镜及附件的放大倍数不同,因此校正目镜测微尺必须针对特定的显微镜和附件(特定的物镜、目镜、镜筒长度)进行,而且只能在特定的情况下重复使用,当更换不同放大(特定的物镜、目镜、镜筒长度)进行,而且只能在特定的情况下重复使用,当更换不同放大倍数的目镜或物镜时,必须重新校正目镜测微尺每一格所代表的长度。倍数的目镜或物镜时,必须重新校正目镜测微尺每一格所代表的长度。2 2细胞大小的测定细胞大小的测定移去镜台测微尺,换上酵母菌标本片,先在低倍镜下找到目的物,然后在高倍镜下用目镜测微移去镜台测微尺,换上酵母菌标本片,先在低倍镜下找到目的物,然后在高倍镜

9、下用目镜测微尺来测量酵母菌菌体的长,宽各占几格(不足一格的部分估计到小数点后一位数)。测出的格尺来测量酵母菌菌体的长,宽各占几格(不足一格的部分估计到小数点后一位数)。测出的格数乘上目镜测微尺每格的校正值,即等于该菌的长和宽。一般测量菌体的大小要在同一个标本数乘上目镜测微尺每格的校正值,即等于该菌的长和宽。一般测量菌体的大小要在同一个标本片上测定片上测定 10102020 个菌体,求出平均值,才能代表该菌的大小。而且一般是用对数生长期的菌体个菌体,求出平均值,才能代表该菌的大小。而且一般是用对数生长期的菌体进行测定。进行测定。同法用油镜测定枯草杆菌染色标本的长和宽。同法用油镜测定枯草杆菌染色标

10、本的长和宽。五、实验报告将实验结果填入下列表格将实验结果填入下列表格表表 1 1 目镜测微目尺校正结果目镜测微目尺校正结果物镜物镜 目尺格数目尺格数 台尺格数台尺格数 目尺校正值(目尺校正值(mm)10104040100100表表 2 2 酵母菌大小测定记录酵母菌大小测定记录 (格)(格)1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 151 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 平均值平均值长长宽宽表表 3 3 枯草杆菌大小测定记录枯草杆菌大小测定记录 (格)(格)细胞数细胞数 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14

11、151 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 平均值平均值长长宽宽结果计算结果计算 长长mm平均格数校正值平均格数校正值宽宽mm平均格数校正值平均格数校正值大小表示:宽大小表示:宽mm长长mm微生物的显微直接计数法微生物的显微直接计数法一、实验目的了解血球计数板的构造、计数原理和计数方法,掌握显微镜下直接计数的技能。了解血球计数板的构造、计数原理和计数方法,掌握显微镜下直接计数的技能。二、实验原理测定微生物细胞数量的方法很多,通常采用的有显微直接计数法和平板计数法。测定微生物细胞数量的方法很多,通常采用的有显微直接计数法和平板计数法。显微计数法适用于各种含单细胞菌

12、体的纯培养悬浮液,如有杂菌或杂质,常不易分辨。菌体较显微计数法适用于各种含单细胞菌体的纯培养悬浮液,如有杂菌或杂质,常不易分辨。菌体较大的酵母菌或霉菌孢子可采用血球计数板,一般细菌则采用彼得罗夫霍泽(大的酵母菌或霉菌孢子可采用血球计数板,一般细菌则采用彼得罗夫霍泽( Petrof HausserPetrof Hausser)细菌计数板。两种计数板的原理和部件相同,只是细菌计数板较薄,可以使用油镜观察。而血细菌计数板。两种计数板的原理和部件相同,只是细菌计数板较薄,可以使用油镜观察。而血球计数板较厚,不能使用油镜,计数板下部的细菌不易看清。球计数板较厚,不能使用油镜,计数板下部的细菌不易看清。血

13、球计数板是一块特制的厚型载玻片,载玻片上有血球计数板是一块特制的厚型载玻片,载玻片上有 4 4 条槽而构成条槽而构成 3 3 个平台。中间的平台较个平台。中间的平台较宽,其中间又被一短横槽分隔成两半,每个半边上面各有一个计数区,计数区的刻度有两种:宽,其中间又被一短横槽分隔成两半,每个半边上面各有一个计数区,计数区的刻度有两种:一种是计数区分为一种是计数区分为 1616 个大方格(大方格用三线隔开),而每个大方格又分成个大方格(大方格用三线隔开),而每个大方格又分成 2525 个小方格;另个小方格;另一种是一个计数区分成一种是一个计数区分成 2525 个大方格(大方格之间用双线分开),而每个大

14、方格又分成个大方格(大方格之间用双线分开),而每个大方格又分成 1616 个小个小方格。但是不管计数区是哪一种构造,它们都有一个共同特点,即计数区都由方格。但是不管计数区是哪一种构造,它们都有一个共同特点,即计数区都由 400400 个小方格组个小方格组成。成。计数区边长为计数区边长为 1mm1mm,则计数区的面积为则计数区的面积为 l mml mm2 2,每个小方格的面积为每个小方格的面积为 1/400mm1/400mm2 2。盖上盖玻盖上盖玻片后,计数区的高度为,所以每个计数区的体积为,每个小方格的体积为片后,计数区的高度为,所以每个计数区的体积为,每个小方格的体积为 1/4000mm1/

15、4000mm3 3。使用血球计数板计数时,先要测定每个小方格中微生物的数量,再换算成每毫升菌液(或使用血球计数板计数时,先要测定每个小方格中微生物的数量,再换算成每毫升菌液(或每克样品)中微生物细胞的数量。每克样品)中微生物细胞的数量。已知:已知:1mm1mm3 3体积体积=10 mm=10 mm10 mm10 mm10 mm= 1000mm10 mm= 1000mm3 3所以:所以:1mm1mm3 3体积应含有小方格数为体积应含有小方格数为 1000mm1000mm3 3/1/4000mm/1/4000mm3 3=4=410106 6个小方格,即系数个小方格,即系数 K=4K=410106

16、6。因此:每因此:每 mlml 菌悬液中含有细胞数菌悬液中含有细胞数= = 每个小方格中细胞平均数(每个小方格中细胞平均数(N N)系数()系数(K K)菌液稀释)菌液稀释倍数(倍数(d d)三、实验器材1 1活材料:酿酒酵母培养液。活材料:酿酒酵母培养液。2 2器材:显微镜、血球计数板、盖玻片(器材:显微镜、血球计数板、盖玻片(22mm22mm22mm22mm)、擦镜纸等。)、擦镜纸等。四、实验方法1 1视待测菌悬液浓度,加无菌水适当稀释(。视待测菌悬液浓度,加无菌水适当稀释(。2 2取洁净的血球计数板一块,在计数区上盖上一块盖玻片。取洁净的血球计数板一块,在计数区上盖上一块盖玻片。3 3将

17、酵母菌悬液摇匀,用滴管吸取少许,从计数板中间平台两侧的沟槽内沿盖玻片的下边缘将酵母菌悬液摇匀,用滴管吸取少许,从计数板中间平台两侧的沟槽内沿盖玻片的下边缘摘入一小滴(不宜过多),让菌悬液利用液体的表面张力充满计数区,勿使气泡产生,并用摘入一小滴(不宜过多),让菌悬液利用液体的表面张力充满计数区,勿使气泡产生,并用吸水纸吸去沟槽中流出的多余菌悬液。也可以将菌悬液直接滴加在计数区上,不要使计数区吸水纸吸去沟槽中流出的多余菌悬液。也可以将菌悬液直接滴加在计数区上,不要使计数区两边平台沾上菌悬液,以免加盖盖玻片后,造成计数区深度的升高。然后加盖盖玻片(勿使两边平台沾上菌悬液,以免加盖盖玻片后,造成计数

18、区深度的升高。然后加盖盖玻片(勿使产生气泡)。产生气泡)。4 4静置片刻,将血球计数板置载物台上夹稳,先在低倍镜下找到计数区后,再转换高倍镜观静置片刻,将血球计数板置载物台上夹稳,先在低倍镜下找到计数区后,再转换高倍镜观察并计数。由于生活细胞的折光率和水的折光率相近,观察时应减弱光照的强度。察并计数。由于生活细胞的折光率和水的折光率相近,观察时应减弱光照的强度。5 5计数时若计数区是由计数时若计数区是由 1616 个大方格组成,按对角线方位,数左上、左下、右上、右下的个大方格组成,按对角线方位,数左上、左下、右上、右下的 4 4个中方格(即个中方格(即 100100 小方格)的菌数。如果是小方

19、格)的菌数。如果是2525 个大方格组成的计数区,除数上述四个中方格个大方格组成的计数区,除数上述四个中方格外,还需数中央外,还需数中央 l l 个中方格的菌数(即个中方格的菌数(即 8080 个小方格)。如菌体位于中方格的双线上,计数时个小方格)。如菌体位于中方格的双线上,计数时则数上线不数下线,数左线不数右线,以减少误差。则数上线不数下线,数左线不数右线,以减少误差。6 6对于出芽的酵母菌,芽体达到母细胞大小一半时,即可作为两个菌体计算。每个样品重复对于出芽的酵母菌,芽体达到母细胞大小一半时,即可作为两个菌体计算。每个样品重复计数计数 2 23 3 次(每次数值不应相差过大,否则应重新操作

20、),求出每一个小方格中细胞平均数次(每次数值不应相差过大,否则应重新操作),求出每一个小方格中细胞平均数(N N),按公式计算出每),按公式计算出每 mlml(g g)菌悬液所含酵母菌细胞数量。)菌悬液所含酵母菌细胞数量。7 7测数完毕,取下盖玻片,用水将血球计数板冲洗干净,切勿用硬物洗刷或抹擦,以免损坏测数完毕,取下盖玻片,用水将血球计数板冲洗干净,切勿用硬物洗刷或抹擦,以免损坏网格刻度。洗净后自行晾干或用吹风机吹干,放入盒内保存。网格刻度。洗净后自行晾干或用吹风机吹干,放入盒内保存。五、实验报告将实验结果填入下表中:将实验结果填入下表中:计数次数计数次数1 1第一次第一次第二次第二次2 2

21、每个大中方格菌数每个大中方格菌数3 34 45 5稀稀 释释倍倍 数数1ml1ml 菌液总菌数菌液总菌数 平均值平均值实验室环境和人体表面微生物的检查一、实验目的1. 1.证明实验室环境与体表存在微生物。证明实验室环境与体表存在微生物。2 2比较来自不同场所与不同条件下细菌的数量和类型。比较来自不同场所与不同条件下细菌的数量和类型。3 3观察不同类群微生物的菌落形态特征。观察不同类群微生物的菌落形态特征。4 4体会无菌操作的重要性。体会无菌操作的重要性。二、实验原理平板培养基含有细菌生长所需要的营养成分,当取自不同来源的样品接种于培养基上,在平板培养基含有细菌生长所需要的营养成分,当取自不同来

22、源的样品接种于培养基上,在适宜温度下培养适宜温度下培养 1 12d2d 内每一菌体即能通过很多次细胞分裂而进行繁殖,形成一个可见的细胞内每一菌体即能通过很多次细胞分裂而进行繁殖,形成一个可见的细胞群体集落,称为菌落。每一种细菌所形成的菌落都有它自己的特点,例如菌落的大小,表面干群体集落,称为菌落。每一种细菌所形成的菌落都有它自己的特点,例如菌落的大小,表面干燥或湿润、隆起或扁平、粗糙或光滑,边缘整齐或不整齐,菌落透明或半透明或不透明,颜色燥或湿润、隆起或扁平、粗糙或光滑,边缘整齐或不整齐,菌落透明或半透明或不透明,颜色以及质地疏松或紧密等。因此,可通过平板培养来检查环境中细菌的数量和类型。以及

23、质地疏松或紧密等。因此,可通过平板培养来检查环境中细菌的数量和类型。三、器材l l培养基肉膏蛋白胨琼脂平板。培养基肉膏蛋白胨琼脂平板。2 2仪器或其他用具无菌水,灭菌棉签仪器或其他用具无菌水,灭菌棉签( (装在试管内装在试管内) ),接种环,试管架,酒精灯或煤气灯等。,接种环,试管架,酒精灯或煤气灯等。四、操作步骤l l写标签写标签任何一个实验,在动手操作前均需首先将器皿用记号笔做上记号,写上班级、姓名、日期,本任何一个实验,在动手操作前均需首先将器皿用记号笔做上记号,写上班级、姓名、日期,本次实验还要写上样品来源次实验还要写上样品来源( (如实验室空气或无菌室空气或头发等如实验室空气或无菌室

24、空气或头发等) ), 字尽量小些,字尽量小些, 写在皿底的一边,写在皿底的一边,不要写在当中,以免影响观察结果。不要写在当中,以免影响观察结果。培养皿的记号一般写在皿底上。如果写在皿盖上,同时观察两个以上培养皿的结果,打开皿盖培养皿的记号一般写在皿底上。如果写在皿盖上,同时观察两个以上培养皿的结果,打开皿盖时,容易混淆。时,容易混淆。2 2实验室细菌检查实验室细菌检查(1)(1)空气将一个肉膏蛋白胨琼脂平板放在当时做实验的实验室,移去皿盖,使琼脂培养基表面暴空气将一个肉膏蛋白胨琼脂平板放在当时做实验的实验室,移去皿盖,使琼脂培养基表面暴露在空气中;将另一肉膏蛋白胨琼脂平板放在无菌室或无人走动的

25、其他实验室,移去皿盖。露在空气中;将另一肉膏蛋白胨琼脂平板放在无菌室或无人走动的其他实验室,移去皿盖。lh lh后盖上两个皿盖。后盖上两个皿盖。(2)(2)实验台和门的旋钮实验台和门的旋钮用记号笔在皿底外面中央画一直线,用记号笔在皿底外面中央画一直线, 再再在此线中间处画一垂直线。在此线中间处画一垂直线。取棉签左手拿装有棉签的试管,取棉签左手拿装有棉签的试管, 在火焰在火焰旁用右手的手掌边缘和小指、无名指夹持旁用右手的手掌边缘和小指、无名指夹持棉塞棉塞( (或试管帽或试管帽) ),将其取出,将管口很快,将其取出,将管口很快地通过煤气灯地通过煤气灯( (或酒精灯或酒精灯) )的火焰,烧灼管的火焰

26、,烧灼管口;轻轻地倾斜试管,用右手的拇指和食口;轻轻地倾斜试管,用右手的拇指和食指将棉签小心地取出。塞回棉塞指将棉签小心地取出。塞回棉塞 ( (或试管或试管帽帽) ),并将空试管放在试管梁上。,并将空试管放在试管梁上。弄湿棉签左手取灭菌水试管,弄湿棉签左手取灭菌水试管, 如上法拨如上法拨出棉塞出棉塞( (或试管帽或试管帽) )并烧灼管口,将棉签插并烧灼管口,将棉签插入水中,再提出水面,在管壁上挤压一下入水中,再提出水面,在管壁上挤压一下以除去过多的水分,小心将棉签取出,烧以除去过多的水分,小心将棉签取出,烧灼管口,塞回棉塞灼管口,塞回棉塞( (或试管帽或试管帽) ),并将灭菌,并将灭菌水试管放

27、在试管梁上。水试管放在试管梁上。取样将湿棉签在实验台面或门旋钮上取样将湿棉签在实验台面或门旋钮上擦拭约擦拭约 2cm2cm2 2的范围的范围接种在火焰旁用左手拇指和食指或中接种在火焰旁用左手拇指和食指或中指使平皿开启成一缝再将棉签伸人,在指使平皿开启成一缝再将棉签伸人,在琼脂表面顶端接种,即滚动一下,立即闭琼脂表面顶端接种,即滚动一下,立即闭合皿盖。合皿盖。 将原放棉签的空试管拨出棉塞将原放棉签的空试管拨出棉塞( (或或试管帽试管帽) ),烧灼管口,插入用过的棉签,将,烧灼管口,插入用过的棉签,将试管放回试管架。试管放回试管架。划线另取接种环在火焰上灭菌,划线另取接种环在火焰上灭菌, 进行划进

28、行划线,整个划线操作均要求无菌操作,即靠线,整个划线操作均要求无菌操作,即靠近火焰,而且动作要快。近火焰,而且动作要快。3 3人体细菌的检查人体细菌的检查(1 1)手指)手指( (洗手前与洗手后洗手前与洗手后) )分别在两个琼脂平板上标明洗手前与分别在两个琼脂平板上标明洗手前与洗手后洗手后( (班级、姓名日期班级、姓名日期) )。移去皿盖,移去皿盖, 将未洗过的手指在琼脂平板将未洗过的手指在琼脂平板的表面,轻轻地来回划线,盖上皿盖。的表面,轻轻地来回划线,盖上皿盖。用肥皂和刷子,用肥皂和刷子,用力刷手,用力刷手,在流水中冲在流水中冲洗干净,干燥后,在另一琼脂平板表面来洗干净,干燥后,在另一琼脂

29、平板表面来回移动,盖上皿盖。回移动,盖上皿盖。(2)(2)头发在揭开皿盖的琼脂平板的上方,头发在揭开皿盖的琼脂平板的上方,用用手将头发用力摇动数次,使细菌降落到玻手将头发用力摇动数次,使细菌降落到玻脂平板表面,然后盖上皿盖。脂平板表面,然后盖上皿盖。A.A.接种时,用左手将平皿开启一缝;接种时,用左手将平皿开启一缝; B.B.棉棉签伸入平板接种签伸入平板接种; ;C. C.用己灭菌并冷却了的接种环划线用己灭菌并冷却了的接种环划线;D.;D.第二第二部分划线部分划线;E.;E.最后部分划线最后部分划线(3)(3)咳嗽将去皿盖的琼脂平板放在离口约咳嗽将去皿盖的琼脂平板放在离口约6 68cm8cm

30、处,对着琼脂表面用力咳嗽,然处,对着琼脂表面用力咳嗽,然后盖上皿盖。后盖上皿盖。(4)(4)鼻腔鼻腔按照实验台检查法的步骤按照实验台检查法的步骤和和,取,取出棉签,并将其弄湿。出棉签,并将其弄湿。用湿棉签在鼻腔内滚动数次。用湿棉签在鼻腔内滚动数次。按实验台检查法的步骤按实验台检查法的步骤和和,接种,接种与划线,然后盖上皿盖。与划线,然后盖上皿盖。4 4将所有的琼脂平板翻转,使皿底朝上,将所有的琼脂平板翻转,使皿底朝上,放放 3737培养箱,培养培养箱,培养 1 12d2d。五结果记录方法(1)(1)菌落计数在划线的平板上,菌落计数在划线的平板上,如果菌落很如果菌落很多而重叠,则数平板最后多而重

31、叠,则数平板最后 1/41/4 面积内的菌面积内的菌落数。不是划线的平板,也一分为四,数落数。不是划线的平板,也一分为四,数l/4l/4 面积的菌落数。面积的菌落数。(2)(2)根据菌落大小、形状、高度、干湿等特根据菌落大小、形状、高度、干湿等特征观察不同的菌落类型。但要注意,如果征观察不同的菌落类型。但要注意,如果细菌数量太多,会使很多菌落生长在一细菌数量太多,会使很多菌落生长在一起,或者限制了菌落生长而变得很小,因起,或者限制了菌落生长而变得很小,因而外观不典型,故观察菌落的特点时,要而外观不典型,故观察菌落的特点时,要选择分离得很开的单个菌落。选择分离得很开的单个菌落。菌落特征描写方法如

32、下:菌落特征描写方法如下:大小大、中、小、针尖状。可先将整个大小大、中、小、针尖状。可先将整个平板上的菌落粗略观察一下,再决定大、平板上的菌落粗略观察一下,再决定大、中、小的标准,或由教师指出一个大小范中、小的标准,或由教师指出一个大小范围。围。颜色黄色、金黄色、灰色、乳白色、红颜色黄色、金黄色、灰色、乳白色、红色、粉红色等。色、粉红色等。干湿情况干燥、湿润、粘稠。干湿情况干燥、湿润、粘稠。形态圆形、不规则等。形态圆形、不规则等。高度扁平、隆起、凹下。高度扁平、隆起、凹下。透明程度透明、半透明、不透明。透明程度透明、半透明、不透明。边缘整齐、不整齐。边缘整齐、不整齐。六、实验报告1 1 将实验

33、结果记录于下表中。将实验结果记录于下表中。样样品品来来源源 菌菌落落数数(近近似似值)值) 菌菌落落类类型型大大小小 形形态态 干干湿湿 高高度度 透透明明度度 颜颜色色 边边缘缘1. 1.1 12 2特特征征描描写写3 34 45 51 12 22. 2.3 34 45 52 2 与其他同学所做的实验结果进行比较。与其他同学所做的实验结果进行比较。样样 品品 来来 源源菌菌落落数数( 1/41/4平平板)板)菌菌落落类类型数型数 (近似近似 值值)3 3 比较各种不同来源的样品,哪一种样品的平板菌落数与菌落类型最多比较各种不同来源的样品,哪一种样品的平板菌落数与菌落类型最多4 4 人多的实验室与无菌室(或无人走动的实验室)相比,平板上的菌落数与菌落类型有什么人多的实验室与无菌室(或无人走动的实验室)相比,平板上的菌落数与菌落类型有什么区别你能解释一下造成这种区别的原因吗区别你能解释一下造成这种区别的原因吗5 5 洗手前后的手指培养基平板,菌落数有无区别洗手前后的手指培养基平板,菌落数有无区别6 6 通过本次实验,在你防止培养物的污染与防止微生物的扩散方面,你学到些什么有什么体通过本次实验,在你防止培养物的污染与防止微生物的扩散方面,你学到些什么有什么体会会

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