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1、精选优质文档-倾情为你奉上21卷3期2005年5月生物工程学报Chinese Journal o f Biotechnology V ol. 21N o. 3May 2005R ed ET 重组及其在生物医学中的应用R ed ET R ecombination and its Biomedical 王军平13, 张友明2W ANGJun 2Ping 13and ZH ANG Y ou 2Ming 211, 重庆基因桥研究室, 11State K ey Laboratory o f , and Injury , Institute o f Combined Injury , College o
2、f Preventive Medicine , The Third Military MedicalUniver sity , Chongqing , 21G ene Bridge G mbH , Dresden 01307, G ermany系统而建立的DNA 工程平台摘要通过应用Rac 噬菌体的RecE RecT 和噬菌体的Red Red Red ET 重组, 是一种不依赖于限制性内切酶的分子克隆新技术。运用该技术能够介导PCR 产物或寡核苷酸对目标基因进行剪切、插入、融合及突变等多种操作, 在生物医学领域里具有广阔的应用前景, 尤其在基因组功能研究中对BACs 、PACs 和细菌染色体的
3、打靶修饰以及基因敲除动物DNA 靶分子的快速构建等方面最有效。随着Red ET 重组的推广与应用, 该技术本身也在不断被改进, 在工作效率得到显著提高的同时, 其操作也变得更加简单、省时、省力。结合自身的一些研究结果, 对Red ET 重组的技术特点、发展现状和在生物医学中的应用进行了详细阐述。关键词Red ET 重组, DNA 修饰, BACs , 噬菌体中图分类号Q78文献标识码A 文章编号(2005 Abstract Red ET recombination , a powerful hom olog ous recombination system based on the Red o
4、peron of phage or RecE RecT from Rac phage , provides an innovative approach for DNA engineering. Deletion , insertion and mutation can be quickly and precisely performed on the target gene mediated by Red ET recombination with PCR derived DNA fragments or olig onucleoti 2des. This technical platfor
5、m has extensive applications in biomedical field including bacterial artificial chrom osome m odification , gene knock 2out construction and genetic m odification of E . coli strains as well as some other kinds of m icroorganisms. Recently , Red ET recombination was im proved in several aspects so t
6、hat it becomes m ore powerful and maneuverable. The characteristic and development of Red ET recombination and its biomedical applications were described in this review. K ey w ords Red ET recombination , DNA m odification , bacterial artificial chrom osomes , phage随着包括人类基因组计划在内的各种基因组测序工程的实施与完成, 以序列
7、信息为基础的基因组功能研究随即成为生命科学领域的又一重大课题1。相对于测序工程, 基因组的功能研究就更加复杂和困难。对于某一特定基因, 要想彻底了解其生物学作用, 往往需要对包含基因完整信息的基因组DNA 进行克隆、删除、突变等多种修饰, 从而为后续的表达和功能研究奠定基础。一般情况下, 一个完整的哺乳动物基因包括内含子、外显子以及启动子等调控元件在内的全长DNA 序列都在几十甚至上百个kb , 另外, 还有很多基因是以基因簇形式存在。这种包含完整基因信息的基因组DNAReceived :December 29, 2004; Accepted :M arch 4, 2005.This w or
8、k was supported by grants from The National Natural Sciences F oundation of China (N o. and The T M M U F oundation for returnee.3C orresponding author. T el :283; E 2mail :wangjunp yahoo. com国家自然科学基金资助项目(N o. , 第三军医大学留学回国人员启动资金资助。王军平等:RedET 重组及其在生物医学中的应用通常是经过建库方式被装载于BACs (bacterial artificial chro
9、2m os omes 或PACs (P1artificial chrom os omes 等大容量载体503PCR 将同源臂直接加在供体打靶片段的两侧。经RecE RecT介导, 两端带有同源臂的供体分子就能直接插入到受体DNA 靶分子的同源区部位。通过改变同源臂的区域和它们中间的打靶序列, 人们就可以达到对DNA 靶分子进行插入、剪切等多种目的。同理, 如果将50bp 的同源臂放在线性质粒载体的两端, 通过该系统还可直接克隆或亚克隆DNA 靶分子。由于同源臂可以人为选择, 和DNA 分子大小的限制, ET 克隆可以对任意大的DNA 中2, 3。对如此大的DNA 分子, 此时很难应用PCR 和
10、限制酶等传统分子克隆技术对其进行修饰。另外, 由于限制性内切酶和PCR 都是在体外(in vitro 对DNA 分子进行操作, 所以碱基的无谓突变也常常困扰着实验的正常进行。正是在这种情况下, 一种基于噬菌体同源重组系统的Red ET 重组技术应运而生, 通过该技术可以简单、快速地对任意大的DNA 分子进行各种修饰, 由于重组反应的整个过程都是在大肠杆菌细胞内部完成, 因此就不存在碱基突变的危险, 从而为基因功能研究提供了一个有效的前期操作平台。本文结合我们自己的工作经验, 对Red ET 原理、种另外, 。正因如此, 被国际同行专家誉为分子生物技术领域的一场革命。之后, 包括S tewart
11、 研究小组在内的多个实验室又相继和Red 蛋白组合也具有与RecE 发现噬菌体的Red RecT 类似的同源重组功能9-12。值得一提的是, 无论是RecE 所介导的同源重组, 只有在recBC D 2的大RecT 还是Red Red 肠杆菌中才能充分发挥作用。其原因是recBC D 作为大肠杆菌内非常强效的核酸外切酶, 能够快速降解外源线性DNA 分子, 包括PCR 产物和寡核苷酸13。在应用RecE RecT 和实施同源重组时将recBC D 的主要抑制分子Red Red 进行共表达, 可使同源重组在噬菌体的G am 蛋白(RedrecBC D 的大肠杆菌中同样发挥作用。不同的实验室对+1
12、Red ET , 它是生物体用于纠正自身(DNA 复制过程中产生 或由外界因 素诱导所致DNA 突变的一种内在机制, 由体内的同源重组酶介导完成。同源重组酶的作用机理不同于限制性内切酶, 它不受酶切位点限制, 只要供体和受体DNA 分子间具有一段相同的碱基序列(即所谓的同源臂 两者就能发生重组或替换(图1 。所介导同源重组的命名也各不相RecE RecT 和Red Red 同。除了上述的ET 克隆外, 还有ET 和GET 重组(GET14重组(recombination 11、recombination 、重组遗传工程(Recombinogenic engineering 15以及重组工程(R
13、ecombineer 216所介导的同源重组ing 等。因为RecE RecT 和Red Red图1同源重组示意图Fig. 1The sketch map of hom olog ous recombination H A :hom ology arm A ; H B :hom ology arm B.可以相互通用, 为了统一概念, 最近S tewart 将它们统称为Red ET 重组(Red ET recombination 。在这里Red 是指噬菌 ,ET 则代表了Rac 噬菌体的Red 蛋白组合(Red Red Red17体的RecE RecT 。同源重组酶有多种, 不同的酶在进行同源重
14、组时所需同源臂大小也不同, 其中最为人们熟知的是大肠杆菌RecA 系统。应用RecA 介导的同源重组, 人们已经实现了多种形式的DNA 修饰4, 5。近些年, 有研究者又利用该系统对载有基因组DNA 的BACs 和PACs 进行了成功修饰, 为基因敲除、转基因等研究中上游靶分子的构建提供了一条有效途径6, 7。然而, 由RecA 介导的同源重组所需同源臂长度通常在1kb 左右, 这样长的同源臂要加载到供体打靶分子的两侧并不容易, 而且同源重组过程一般要经过重组(Recombination 和拆分(Res olution 两轮筛选, 操作相对费时、费力, 从而使其应用受到很大程度的限制。1998
15、年S tewart 研究小组报道了另一种可在大肠杆菌中2Red ET 重组的作用机理及其应用方式事实上, 在Red ET 重组出现之前人们对RecE 、RecT 、和Red 这四种蛋白质就有研究, 只不过所关注的是它Red们与DNA 双链断裂修复(D ouble strand break repair , DS BR 的实际上都具有典型的5关系。研究揭示RecE 和Red 3核酸外切酶活性, 它们能够由5末端向3末端酶切双链DNA(包括PCR 产物 , 使DNA 分子的3末端变成单链悬突(318, 19, 体外结合实验和ssDNA overhang 。对于RecT 和Red电子显微镜观察发现它
16、们其实是一种具有退火(Annealing 和链侵入(S trand invasion 功能的单链结合蛋白质20, 21。为此, 人们推测Red ET 重组的作用机理可能是:带有同源臂的作用而使其两端形成单供体DNA 分子首先经RecE 或Red的引导下, 供体分子的同源臂链悬突, 然后在RecT 或Red单链悬突即可与受体分子的同源臂部分发生结合, 最终导致供体与受体DNA 分子发生重组和替换22(图2 。应用的同源重组技术, 它是通过诱导表达Rac 噬菌体的RecE 和RecT 蛋白组合来介导实施重组反应, 当时将这种技术命名为ET 克隆(ET cloning 8。与RecA 介导同源重组不
17、同的是ET 克隆所需同源臂仅为3550bp , 且同源重组效率更高。3550bp 的同源臂意义非同寻常, 人们就可以通过 504Chinese Journal o f Biotechnology 生物工程学报2005,V ol 121,N o 13并且这种修复效率的高低与所选用核苷酸链的性质有关, 应用与受体DNA 分子滞后链(Lagging strand 互补的寡核苷酸效果更好。由于寡核苷酸可以体外快速合成, 所以寡核苷酸修复的成功应用使Red ET 重组更加引起人们的重视。Red ET 重组最初所使用的依托质粒是C olE1来源的和pBAD 2ET g 和pBAD 2gba , 在这两个质
18、粒中RecE RecT Red 被置于P BAD , 同源重组酶的表达Red Red Red 受L 2阿拉伯多糖诱导调控, 9, , 25。在以后的应用中人们逐渐发现, , 。为此, 最近我们对Red ET 的依托, 构建了低拷贝、温度敏感型pSC1012BAD 2gbaA 质粒。这种pSC101来源的质粒在每个细胞中拷贝数为图2Fig. 2The of recombination35个, 于30复制,37以上复制终止。在实验过程中通过简单、合理的改变宿主菌培养温度, 就可使此依托质粒在行使完Red ET 重组功能后自动地从宿主细胞中消失。这样就容易获得比较纯的修饰后重组体。除了对依托质粒的类
19、型进行优化外, 我们还将RecA 引进了Red ET 重组系统。之所以引入RecA 是因为常用工程菌都是RecA 缺失突变的大肠杆菌,RecA 缺失突变的目的是使外源质粒DNA 尤其是BAC 复制稳定。但RecA 的缺失也会带来其它影响, 研究表Red ET :一是构建含和Red 的诱导表达型依托质有RecE RecT Red Red Red 粒, 通过共转染使依托质粒与受体和供体DNA 分子进入同一细胞内, 经诱导表达后即可发生重组反应+8, 9, 23。另外一种方式是筛选和构建具有Red ET 重组功能的大肠杆菌菌株, 如Zhang 等通过对sbcA (RecE RecT 大肠杆菌JC86
20、79染色体上某些限制调节元件及内源性Lac 操纵子进行突变缺失, 获得了一株重组功能型工程菌Y Z 20009; Y u 等则是将突变失活的噬菌体整合到大肠杆菌的染色体中而构建了具有同源重组功能的DY 330、DY 380等菌株10, 24明当RecA 缺失时大肠杆菌接受外源DNA 转化的效率将会显著降低27。为此, 在新的依托质粒中我们将RecA 与一起置于P BAD 启动子之后, 使其与Red 同源Red Red Red 重组酶共同表达。实验结果证实,RecA 的瞬时表达可以通过促进外源DNA 的转化而显著提高Red ET 的同源重组效率, 使得低拷贝型的依托质粒具有高效的同源重组功能。此
21、外, 人们对Red ET 重组介导非抗性基因打靶修饰时所使用的反向筛选系统也进行了多次改进。在尝试了SacB 2Neo8, 23。这两种使用方式各有利弊:由于依托质粒的拷贝数要显著高于染色体的单一拷贝, 所以前者提供重组酶蛋白的表达量和重组效率显著高于后者25; 除了重组效率, 应用依托质粒在BACs 、PACs 或细菌染色体的修饰方面具有优势, 因为依托质粒可和T etR 28后,Jamsai 等29通过合理应用限制性内切以随意转化宿主菌; 但是, 当受体DNA 结构比较稳定, 能够进行反复转化时, 应用第二种方式相对简单、省时24酶2Sce 显著提高了反向筛选系统的严密性; 我们则是选用了
22、只有114kb 的rps L 2Neo 作为反向正向筛选标记基因, 一方面便于PCR 扩增以加载同源臂, 另一方面又可采用卡那霉素和链霉素进行正、反向筛选, 从而使Red ET 重组的操作过程更加简单、易行17。; 另外,应用依托质粒时要涉及到重组结束后依托质粒的清除问题。3Red ET 重组的发展与改进Red ET 重组技术的建立, 让人们实现了以PCR 产物作为供体分子对目的基因的打靶修饰。虽然这已经使同源重组的操作和应用向前迈出了历史性的一步, 但是在某些情况下并不需要以PCR 产物作为供体分子, 所需的是仅仅包含两个同源臂的寡核苷酸短链, 如点突变或蛋白标签的插入等。为此,Red ET
23、 重组建立后不久, 人们即开始尝试应用体外直接合成的寡核苷酸来实施对目标DNA 分子的修饰。令人惊喜的是, 研究发现70100bp 长(两侧各带3550bp 同源臂 的双链和单链寡核苷酸, 同样可以作为打靶分子来对BAC 进行点突变和插入等修饰Zhang 等1725, 264Red ET 重组在生物医学中的应用由于Red ET 重组在DNA 修饰方面具有常规分子克隆技术无法比拟的优越性, 通过选择同源臂的位置以及改变两个同源臂之间的打靶序列, 人们可以达到对DNA 靶分子进行插入、融合、剪切、敲除和突变等多种目的(图3 , 所以该技术在生物医学领域里具有广阔的应用前景和很高的实用价值。目前,R
24、ed ET 重组在生物医学领域里应用最广泛的还是对载有基因组DNA 的BACs 、PACs 进行修饰, 为基因功能和表达研究提供有效的前期操作平台。在具体应用过程中, 当目的BACs 或PACs 仅需要删除某部分基因序列时, 就可以通过Red ET 重组介导带有同源臂的抗性标记基因插入并替。考虑到RecE 和Red对单链寡核苷酸可能不起作用, 所以在上述发现的基础上的依托质粒, 发现又构建了只表达RecT 和Red应用这种质粒进行单链寡核苷酸修复时也具有很高的效率, 王军平等:RedET 重组及其在生物医学中的应用505导实施大肠杆菌染色体的各种遗传修饰。与常规转座子法相比,Red ET 重组
25、介导的染色体修饰不仅高效、快速, 而且还能准确定位。应用这种重组技术人们对大肠杆菌染色体上的多个基因如arcB 、cyaA 、recA 、ptsG 等进行了敲除、替换等修饰, 有目的地改良了一些生物工程菌株11, 30。除了工程菌外, 一些致病大肠杆菌的遗传修饰也在引起人们的重视, 如Murphy 等31就通过该技术病大肠杆菌EHEC 和图3Red ET 重组在DNA 工程中的应用范例Fig. 3The applications of Red ET recombination in DNA engineeringEPEC , 为制备肠道感染病疫。不仅如此, 借助合适此外, 随着多种生物基因组D
26、NA BAC 文库的构建和测序工作的实施与完成, 人们应用Red ET 重组还可对病毒、噬菌体以及其它模式生物的基因组DNA 进行有目的修饰33, 从而加速生物体的基因功能研究。正是由于Red ET 重组在DNA 修饰方面的独特优势, 基于该技术的DNA 工程操作已经开始向生物制药领域拓展, 尤其对于那些通过常规分子克隆很难实现的生物工程药物的研制。如运用这种重组技术对载有聚酮合成酶基因簇的柯氏质粒进行重排、突变、替换等修饰, 从而去创造生成新的抗生素34。最近, Eustaquio 等35就利用此方法在对新生霉素基因簇进行替换修饰后获得了一种新的“杂合抗生素”。换目的基因序列, 这种BACs
27、 或PACs 的一步法修饰在一周内即可完成23, 24。当需要在目的BACs 或PACs 一非筛选性基因(如LacZ 、EG FP 酸序列(如点突变、 时, 力, Red ET 重组才能达到修饰目的17, 25, , 29(图4 。5结语总之, 作为生物工程领域里的一项革新性技术,Red ET 重组能够准确、快速地对目标DNA 分子, 尤其是基因组DNA 大分子进行各种人为修饰, 它的出现使以往通过传统分子克图4应用Red ET 重组介导BAC 修饰的操作示意图Fig. 4The sketch map of BAC m odification mediatedby Red ET recombi
28、nationcsm :counter 2selectable marker ; sm :selectable marker ; H A :hom ology arm A ;H B :hom ology arm B ; Cm :chloram phenicol.隆技术无法完成的多种DNA 操作得以实现。随着后基因组时代的到来,Red ET 重组的发展和应用将会显著推动基因组功能的研究进展。REFERENCES (参考文献1Bogue CW. G enetic m odels in applied physiology. Functional genomics in the m ouse :pow
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30、d Sci USA , 1992,在对BACs 或PACs 修饰的基础上, 运用Red ET 重组还可以进行基因敲除动物上游靶分子的快速构建。基本实施方案有两种, 其一是首先应用Red ET 重组从目标BAC 或PAC 上亚克隆目的基因序列(含左右长短臂 至打靶质粒载体中, 然后再应用Red ET 重组将带有原核与真核双启动子的p GK neo 定点插入并删除目的基因序列; 另外一种实施方式是, 首先对目标BAC 或PAC 进行修饰, 即将带有原核与真核双启动子的p GK neo 定点插入并删除目的基因序列, 然后再通过Red ET 重组进行亚克隆。两种方案都是仅需两次简单的Red ET 重组
31、即能完成基因敲除靶分子的构建。同理, 对于条件性敲除DNA 靶分子的构建则需再多进行一步Red ET 重组和Cre 重组过程。与传统PCR 扩增和酶切连接法相89(18 :8794-87973Zhao S. A com prehensive BAC res ource. Nucleic Acid Res , 2001, 29(1 :141-1434O C onnor M , Peifer M , Bender W. C onstruction of large DNA seg 2ments in E scherichia coli . Science , 1989, 244(4910 :130
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